| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 英文缩略符及其中英文对照表 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-36页 |
| 1.1 引言 | 第16-17页 |
| 1.2 植物根系对氮、磷的响应机制 | 第17-21页 |
| 1.2.1 NO_3~-对植物根系生长发育的影响 | 第17-18页 |
| 1.2.2 低氮胁迫对植物根系生长发育的影响 | 第18-19页 |
| 1.2.3 低磷胁迫对植物根系生长发育的影响 | 第19-21页 |
| 1.2.4 水稻根系形态特征 | 第21页 |
| 1.3 植物激素及信号分子对植物根系生长发育的影响 | 第21-36页 |
| 1.3.1 生长素的合成 | 第21-22页 |
| 1.3.2 生长素的极性运输 | 第22-24页 |
| 1.3.3 生长素极性运输对植物根系发生发育的影响 | 第24-25页 |
| 1.3.4 生长素及其极性运输在氮、磷胁迫条件下对植物根系构型的调节作用 | 第25-26页 |
| 1.3.5 独脚金内酯的合成及作用 | 第26-28页 |
| 1.3.6 独脚金内酯对植物根系生长发育的影响 | 第28-29页 |
| 1.3.7 独脚金内酯和生长素协同调控植物生长发育 | 第29-30页 |
| 1.3.8 一氧化氮的合成途径 | 第30-32页 |
| 1.3.9 一氧化氮对植物根系的影响 | 第32-33页 |
| 1.3.10 一氧化氮和生长素协同调控植物根系的生长发育 | 第33-36页 |
| 第二章 研究目的意义和技术路线 | 第36-38页 |
| 第三章 独脚金内酯对水稻不定根发生的影响 | 第38-56页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 材料与方法 | 第39-44页 |
| 3.2.1 实验材料及生长条件 | 第39页 |
| 3.2.2 独脚金内酯提取和测定 | 第39页 |
| 3.2.3 分蘖数和根系形态分析 | 第39页 |
| 3.2.4 生长素的提取与测定 | 第39-40页 |
| 3.2.5 构建pDR5::GUS转基因材料 | 第40-42页 |
| 3.2.6 [~3H]IAA极性运输 | 第42页 |
| 3.2.7 水稻总RNA提取与qRT-PCR反应 | 第42-44页 |
| 3.2.8 数据处理 | 第44页 |
| 3.3 结果 | 第44-53页 |
| 3.3.1 野生型水稻、d10和d3突变体的不定根数量变化 | 第44-47页 |
| 3.3.2 外源添加GR24对d10和d3不定根数的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.3 d10和d3突变体生长素含量变化 | 第48-49页 |
| 3.3.4 d10和d3突变体根系中OsPIN基因的表达 | 第49-50页 |
| 3.3.5 外源添加NAA和NPA对不定根生长的影响 | 第50-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-56页 |
| 第四章 独脚金内酯在低氮、低磷调控水稻根系生长发育过程中的作用 | 第56-68页 |
| 4.1 引言 | 第56-57页 |
| 4.2 材料与方法 | 第57-58页 |
| 4.2.1 实验材料及生长条件 | 第57页 |
| 4.2.2 根系形态分析 | 第57页 |
| 4.2.3 独脚金内酯测定 | 第57-58页 |
| 4.2.4 水稻总RNA提取与qRT-PCR反应 | 第58页 |
| 4.2.5 总氮和总磷含量测定 | 第58页 |
| 4.2.6 数据处理 | 第58页 |
| 4.3 结果与分析 | 第58-65页 |
| 4.3.1 低磷和低氮处理对水稻根系生长发育的影响 | 第58-62页 |
| 4.3.2 低磷和低氮处理对独脚金内酯合成与分泌的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.3 独脚金内酯对水稻根系生长发育的影响 | 第63-65页 |
| 4.4 讨论 | 第65-68页 |
| 第五章 生长素在低氮、低磷调控水稻根系生长发育过程中的作用 | 第68-78页 |
| 5.1 引言 | 第68-69页 |
| 5.2 材料与方法 | 第69-70页 |
| 5.2.1 实验材料及生长条件 | 第69页 |
| 5.2.2 根系形态分析 | 第69页 |
| 5.2.3 生长素的提取与测定 | 第69页 |
| 5.2.4 DR5::GUS染色 | 第69页 |
| 5.2.5 [~3H]IAA极性运输 | 第69页 |
| 5.2.6 数据处理 | 第69-70页 |
| 5.3 结果与分析 | 第70-76页 |
| 5.3.1 生长素对水稻根系生长发育的影响 | 第70-72页 |
| 5.3.2 外源施加GR24对生长素极性运输的影响 | 第72-76页 |
| 5.4 讨论 | 第76-78页 |
| 第六章 一氧化氮在低氮、低磷诱导水稻根系伸长过程中的作用 | 第78-92页 |
| 6.1 引言 | 第78页 |
| 6.2 材料和方法 | 第78-80页 |
| 6.2.1 实验材料及生长条件 | 第78-79页 |
| 6.2.2 根系形态分析 | 第79页 |
| 6.2.3 水稻总RNA提取与qRT-PCR反应 | 第79页 |
| 6.2.4 根尖一氧化氮水平的测定 | 第79-80页 |
| 6.2.5 硝酸还原酶活性测定 | 第80页 |
| 6.2.6 数据处理 | 第80页 |
| 6.3 结果 | 第80-89页 |
| 6.3.1 一氧化氮对水稻种子根伸长的影响 | 第80-85页 |
| 6.3.2 低氮、低磷处理下水稻根尖一氧化氮合成途径 | 第85-86页 |
| 6.3.3 nia2突变体对低氮和低磷胁迫的响应 | 第86-89页 |
| 6.4 讨论 | 第89-92页 |
| 第七章 独脚金内酯和一氧化氮在调控水稻根系伸长过程中的相互关系 | 第92-102页 |
| 7.1 引言 | 第92页 |
| 7.2 材料和方法 | 第92-94页 |
| 7.2.1 实验材料及生长条件 | 第92-93页 |
| 7.2.2 独脚金内酯测定 | 第93页 |
| 7.2.3 根系系统和表皮细胞的测量 | 第93页 |
| 7.2.4 pCYCB1;1::GUS材料 | 第93页 |
| 7.2.5 蛋白免疫痕迹(Western blot) | 第93页 |
| 7.2.6 数据处理 | 第93-94页 |
| 7.3 结果 | 第94-99页 |
| 7.3.1 独脚金内酯参与一氧化氮诱导水稻根系伸长 | 第94-96页 |
| 7.3.2 一氧化氮促进D53蛋白的降解 | 第96-98页 |
| 7.3.3 一氧化氮和独脚金内酯对根尖分生区的影响 | 第98-99页 |
| 7.4 讨论 | 第99-102页 |
| 全文结论 | 第102-104页 |
| 创新点 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-126页 |
| 附录 | 第126-142页 |
| 在读期间发表的论文 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144页 |
