| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 文献综述 | 第9-18页 |
| 1.1 布氏鲳鳕简介及研究进展 | 第9-10页 |
| 1.2 甘丙肽(GAL)家族的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.3 甘丙肽及其受体的生理功能 | 第11-15页 |
| 1.3.0 调节摄食与新陈代谢 | 第11-12页 |
| 1.3.1 胃肠蠕动 | 第12-13页 |
| 1.3.2 学习与记忆 | 第13页 |
| 1.3.3 焦虑行为调节 | 第13页 |
| 1.3.4 癫痫 | 第13-14页 |
| 1.3.5 肿瘤 | 第14页 |
| 1.3.6 痛觉感受 | 第14页 |
| 1.3.7 神经系统 | 第14-15页 |
| 1.4 GAL与其他食欲因子的相互作用 | 第15-16页 |
| 1.5 温度对鱼类生长及摄食的影响 | 第16-17页 |
| 1.6 温度对鱼类生长因子的影响 | 第17页 |
| 1.7 本研究的主要目的和意义 | 第17-18页 |
| 布氏鲳鯵GalR1基因的克隆 | 第18-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-22页 |
| 2.1.1 实验鱼 | 第18页 |
| 2.1.2 药品与试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要溶液和培养基配制 | 第20-21页 |
| 2.1.5 RNA提取相关工具的无RNA酶处理 | 第21页 |
| 2.1.6 引物 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-32页 |
| 2.2.1 布氏鲳鲹脑总RNA的提取 | 第22页 |
| 2.2.2 总RNA质量检测 | 第22-23页 |
| 2.2.3 GalR1中间片段的扩增 | 第23-24页 |
| 2.2.3.1 合成中间片段的cDNA模板 | 第23页 |
| 2.2.3.2 中间片段的扩增 | 第23-24页 |
| 2.2.4 GalR1 3'和5'末端的扩增 | 第24-27页 |
| 2.2.4.1 3'和5'末端cDNA模板的合成 | 第24页 |
| 2.2.4.2 GalR1的3'和5'RACE | 第24-27页 |
| 2.2.5 回收目的片段 | 第27页 |
| 2.2.6 目的片段的连接、转化 | 第27-28页 |
| 2.2.7 筛选阳性克隆 | 第28-29页 |
| 2.2.8 生物信息学分析 | 第29页 |
| 2.2.9 基因组织表达分析 | 第29-32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-40页 |
| 2.3.1 脑总RNA提取和质量鉴定 | 第32-33页 |
| 2.3.2 TbGalRl基因cDNA中间片段的克隆 | 第33页 |
| 2.3.3 布氏鲳鯵GalR1基因3'末端的克隆 | 第33-34页 |
| 2.3.4 TbGaIRl基因5'末端的克隆 | 第34页 |
| 2.3.5 TbGalR1基因的cDNA全长序列分析 | 第34-35页 |
| 2.3.6 TbGalRl的氨基酸组分分析 | 第35-36页 |
| 2.3.7 TbGalRl的氨基酸序列同源性分析 | 第36-38页 |
| 2.3.8 TbGalR1进化树的构建 | 第38页 |
| 2.3.9 TbGalR1氨基酸的二级与三级结构分析 | 第38-39页 |
| 2.3.10 TbGalR1的组织分布 | 第39-40页 |
| 2.4 讨论 | 第40-41页 |
| 不同温度下的布氏鲳鯵的生长情况及TbGalR1基因的表达变化 | 第41-48页 |
| 3.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 3.1.1 实验鱼 | 第41页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第41-42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-43页 |
| 3.2.1 驯化及日常管理 | 第42页 |
| 3.2.2 体重和摄食量统计 | 第42页 |
| 3.2.3 不同水温条件下布氏鲳鯵幼鱼TbGalR1的表达变化 | 第42-43页 |
| 3.2.4 生长数据分析 | 第43页 |
| 3.3 实验结果 | 第43-46页 |
| 3.3.1 不同水温对布氏鲳鯵幼鱼生长的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.2 不同水温对布氏鲳鯵幼鱼摄食的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.3 不同水温对布氏鲳鯵幼鱼GalR1的表达变化 | 第45-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-58页 |
| 作者攻读学位期间论文发表情况 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
