| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-31页 |
| 1.1 甾体药物概述 | 第13-16页 |
| 1.1.1 甾体化合物结构式 | 第13-14页 |
| 1.1.2 肾上腺皮质激素类药物结构式 | 第14页 |
| 1.1.3 肾上腺糖皮质激素的应用 | 第14-16页 |
| 1.1.4 肾上腺皮质激素类药物的生产 | 第16页 |
| 1.2 甾类化合物的微生物转化 | 第16-18页 |
| 1.2.1 甾类化合物微生物转化概述 | 第16-17页 |
| 1.2.2 甾类化合物微生物转化的反应类型 | 第17-18页 |
| 1.3 甾类化合物微生物C_(11)羟化反应 | 第18-22页 |
| 1.3.1 甾体C_(11)羟化反应的重要性 | 第18-19页 |
| 1.3.2 微生物C_(11)羟化反应机理 | 第19-22页 |
| 1.4 微生物C_(11)羟化反应研究进展 | 第22-25页 |
| 1.4.1 微生物11β羟化研究进展 | 第22-24页 |
| 1.4.2 微生物11α羟化研究进展 | 第24页 |
| 1.4.3 微生物C_(11)羟化反应技术难题 | 第24-25页 |
| 1.5 离子液体-水两相生物催化体系 | 第25-29页 |
| 1.5.1 甾体药物微生物两相催化体系 | 第25-26页 |
| 1.5.2 离子液体基础 | 第26-27页 |
| 1.5.3 离子液体的特性 | 第27-28页 |
| 1.5.4 离子液体在生物转化中的应用 | 第28-29页 |
| 1.6 本文的研究思路及目标 | 第29-31页 |
| 第二章 离子液体应用于甾体微生物转化的基础研究 | 第31-45页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第32-34页 |
| 2.2.1 试剂 | 第32页 |
| 2.2.2 菌种 | 第32页 |
| 2.2.3 培养基 | 第32-33页 |
| 2.2.4 仪器及设备 | 第33-34页 |
| 2.3 分析方法 | 第34-37页 |
| 2.3.1 溶解度的测定 | 第34-36页 |
| 2.3.2 高效液相色谱法测定分配系数 | 第36-37页 |
| 2.3.3 葡萄糖浓度测定 | 第37页 |
| 2.4 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.4.1 菌株的培养 | 第37页 |
| 2.4.2 两相体系培养基pH的测定 | 第37-38页 |
| 2.4.3 溶解度及两相分配系数测定 | 第38-39页 |
| 2.4.4 生物相容性测定 | 第39页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第39-44页 |
| 2.5.1 离子液体中的溶解度 | 第39-40页 |
| 2.5.2 离子液体-水两相分配系数 | 第40-41页 |
| 2.5.3 离子液体对液体培养基pH的影响 | 第41页 |
| 2.5.4 离子液体对新月弯孢霉的生物相容性 | 第41-42页 |
| 2.5.5 离子液体对黑根霉的生物相容性 | 第42-44页 |
| 2.6 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 新月弯孢霉11β羟化反应 | 第45-61页 |
| 3.1 引言 | 第45页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.2.1 试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.2 菌种 | 第46页 |
| 3.2.3 培养基 | 第46页 |
| 3.2.4 仪器及设备 | 第46页 |
| 3.3 分析方法 | 第46-48页 |
| 3.3.1 生物量的测定 | 第46页 |
| 3.3.2 高效液相色谱法测定转化率 | 第46-47页 |
| 3.3.3 薄层层析法测定转化率 | 第47-48页 |
| 3.4 实验方法 | 第48-51页 |
| 3.4.1 菌株的培养 | 第48页 |
| 3.4.2 底物投料方式 | 第48-49页 |
| 3.4.3 紫外线照射诱变 | 第49页 |
| 3.4.4 培养基及工艺优化 | 第49-50页 |
| 3.4.5 底物预处理工艺 | 第50页 |
| 3.4.6 两相催化体系构建 | 第50-51页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第51-59页 |
| 3.5.1 菌株紫外诱变筛选 | 第51-52页 |
| 3.5.2 新月弯孢霉生物催化和转化 | 第52-55页 |
| 3.5.3 新月弯孢霉优化条件下转化结果 | 第55-56页 |
| 3.5.4 底物预处理工艺 | 第56-58页 |
| 3.5.5 有机溶剂-水两相催化转化 | 第58页 |
| 3.5.6 离子液体-水两相催化转化 | 第58-59页 |
| 3.6 本章小结 | 第59-61页 |
| 第四章 黑根霉11α羟化反应离子液体-水两相体系研究 | 第61-77页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第62页 |
| 4.2.1 试剂 | 第62页 |
| 4.2.2 菌种 | 第62页 |
| 4.2.3 培养基 | 第62页 |
| 4.2.4 仪器及设备 | 第62页 |
| 4.3 分析方法 | 第62-63页 |
| 4.3.1 生物量的测定 | 第62页 |
| 4.3.2 高效液相色谱法测定转化率 | 第62-63页 |
| 4.3.3 薄层层析法测定转化率 | 第63页 |
| 4.4 实验方法 | 第63-64页 |
| 4.4.1 成熟黑根霉菌丝体的培养 | 第63页 |
| 4.4.2 底物投料方式 | 第63-64页 |
| 4.4.3 两相催化体系构建 | 第64页 |
| 4.4.4 黑根霉多批次催化转化 | 第64页 |
| 4.4.5 离子液体回收 | 第64页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第64-75页 |
| 4.5.1 黑根霉菌体生长曲线 | 第64-65页 |
| 4.5.2 两相黑根霉转化体系研究 | 第65-67页 |
| 4.5.3 离子液体与有机溶剂的比较 | 第67-68页 |
| 4.5.4 两相体系相比对转化率的影响 | 第68-69页 |
| 4.5.5 离子液体相中底物浓度对转化率的影响 | 第69-70页 |
| 4.5.6 两相催化体系半连续生产 | 第70-71页 |
| 4.5.7 离子液体重复利用 | 第71-73页 |
| 4.5.8 两相体系放大实验 | 第73-74页 |
| 4.5.9 离子液体-水两相体系应用于微生物羟化反应的机理探讨 | 第74-75页 |
| 4.6 本章小结 | 第75-77页 |
| 第五章 结论与建议 | 第77-81页 |
| 5.1 结论 | 第77-78页 |
| 5.2 建议 | 第78-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 作者简介 | 第89-91页 |
| 附图 | 第91-94页 |