| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-20页 |
| ·水稻在短日照条件下促进HD3A 的表达 | 第13-15页 |
| ·长日照抑制HD3A 的表达 | 第15-16页 |
| ·长日照下促进RFT1 的表达 | 第16-18页 |
| ·研究的背景和意义 | 第18-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-37页 |
| ·材料 | 第20-21页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·菌株和质粒 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·主要实验仪器 | 第20页 |
| ·生物软件 | 第20-21页 |
| ·引物、测序 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-37页 |
| ·田间农艺性状的调查 | 第21-22页 |
| ·水稻总RNA 的提取 | 第22页 |
| ·反转录总cDNA | 第22-23页 |
| ·目的片段的获得 | 第23-25页 |
| ·以pTCK309 为骨架的2 个干涉载体的获得 | 第25-26页 |
| ·利用Gateway 重组系统构建的7 个干涉载体 | 第26-27页 |
| ·表达载体pP_(OsEF1)-GUS 及pGEX-6P-EF1 的构建 | 第27页 |
| ·蛋白表达载体pET-32A-EF1 的构建 | 第27页 |
| ·农杆菌的电击转化 | 第27-28页 |
| ·农杆菌介导的水稻转化 | 第28-30页 |
| ·转基因植株的检测 | 第30-31页 |
| ·荧光定量PCR（quantitative Real-time PCR）反应 | 第31页 |
| ·GUS 组织化学染色 | 第31页 |
| ·石蜡切片 | 第31-32页 |
| ·光周期实验 | 第32-33页 |
| ·OsEF1 蛋白在原核细胞中的诱导表达 | 第33-35页 |
| ·重力法亲和纯化OsEF1 蛋白 | 第35-37页 |
| 第三章：结果与分析 | 第37-59页 |
| ·OSEF1 突变体的表型观察与相关农艺性状的统计 | 第37-38页 |
| ·Osef1 突变体的表型观察 | 第37页 |
| ·Osef1 突变体农艺性状的统计 | 第37-38页 |
| ·OSEF1 基因的组织表达情况 | 第38-41页 |
| ·转pP_(OsEF1)-GUS 阳性株的PCR 检测 | 第38-39页 |
| ·植株组织的GUS 活性分析 | 第39-41页 |
| ·OsEF1 表达分析 | 第41页 |
| ·OSEF1 基因的节律性表达分析 | 第41-45页 |
| ·样品RNA 的电泳检测 | 第41-42页 |
| ·标准曲线的分析 | 第42-43页 |
| ·溶解曲线等分析 | 第43-44页 |
| ·OsEF1 基因节律性分析 | 第44-45页 |
| ·RNAI 载体的构建及农杆菌介导的水稻转化 | 第45-54页 |
| ·利用生物信息学分析与OsEF1 互作候选蛋白的部分基因 | 第45-46页 |
| ·水稻RNA 的提取结果 | 第46-47页 |
| ·干涉载体的构建 | 第47-52页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化及田间表型观察 | 第52-53页 |
| ·T_0 代转基因植株的PCR 鉴定 | 第53-54页 |
| ·OSEF1 蛋白在原核细胞中的表达分析及亲和纯化 | 第54-59页 |
| ·原核表达载体的构建: | 第54-55页 |
| ·OsEF1 蛋白在原核细胞中的诱导表达分析 | 第55-56页 |
| ·OsEF 蛋白的亲和纯化 | 第56-57页 |
| ·大量纯化 | 第57-59页 |
| 第四章 结论与讨论 | 第59-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 附录 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简历 | 第69页 |
