中文摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
英汉缩略词对照表 | 第10-12页 |
前言 | 第12-15页 |
1 材料方法 | 第15-20页 |
1.1 实验动物 | 第15页 |
1.2 实验仪器 | 第15-16页 |
1.3 实验试剂 | 第16页 |
1.4 实验方法 | 第16-20页 |
1.4.1 OSAS大鼠模型的建立 | 第16-17页 |
1.4.2 大鼠原代胰岛β细胞的分离、纯化和培养 | 第17-18页 |
1.4.3 胰岛β细胞培养和分组 | 第18页 |
1.4.4 ELISA法检测因子标志物 | 第18页 |
1.4.5 流式细胞仪检测胰岛β细胞凋亡 | 第18-19页 |
1.4.6 样品检测 | 第19-20页 |
1.5 统计学处理 | 第20页 |
2 结果 | 第20-30页 |
2.1 一般情况 | 第20-21页 |
2.2 胰岛β细胞的鉴定 | 第21页 |
2.3 胰岛β细胞及细胞上清液氧化应激及抗氧化指标检测结果 | 第21-25页 |
2.4 胰岛β细胞凋亡检测结果 | 第25-27页 |
2.5 Western-Blot测胰岛β细胞凋亡蛋白Nrf2、HO-1、NQO1、r-GCS的表达水平 | 第27-30页 |
3 讨论 | 第30-36页 |
3.1 OSAS大鼠模型的建立方法 | 第30页 |
3.2 OSAS对大鼠氧化应激的影响 | 第30-32页 |
3.3 OSAS对大鼠胰岛 β 细胞的影响 | 第32-33页 |
3.4 Nrf2-ARE信 号通路对间歇性低氧诱导胰岛 β 细胞的保护 | 第33-34页 |
3.5 EGB通过Nrf2-ARE信号通路对间歇性低氧诱导胰岛 β 细胞的保护 | 第34-36页 |
3.6 研究展望 | 第36页 |
4 结论 | 第36-38页 |
参考文献 | 第38-42页 |
综述 | 第42-50页 |
参考文献 | 第47-50页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第50-51页 |
致谢 | 第51页 |