| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第10-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-39页 |
| 1.1 肉质果实的成熟 | 第14-27页 |
| 1.1.1 乙烯与果实成熟 | 第14-18页 |
| 1.1.2 果实成熟的转录调控 | 第18-21页 |
| 1.1.3 果实中类胡萝卜素的代谢与调控 | 第21-22页 |
| 1.1.4 果实的软化与细胞壁代谢 | 第22-23页 |
| 1.1.5 果实的角质层功能与代谢 | 第23-27页 |
| 1.2 植物中脱落酸的生物合成与降解 | 第27-29页 |
| 1.2.1 植物中脱落酸的从头合成途径与羟基化降解途径 | 第27页 |
| 1.2.2 植物中脱落酸的糖结合途径 | 第27-29页 |
| 1.3 植物中的脱落酸信号转导 | 第29-35页 |
| 1.3.1 植物中的脱落酸受体PYR/PYL/RCAR | 第29-31页 |
| 1.3.2 植物中的2C型蛋白磷酸酶 | 第31-34页 |
| 1.3.3 植物中的SnRK2蛋白激酶 | 第34-35页 |
| 1.4 脱落酸对果实成熟的调控作用 | 第35-38页 |
| 1.4.1 脱落酸代谢对果实成熟的调控 | 第35-36页 |
| 1.4.2 脱落酸信号对果实成熟的调控 | 第36页 |
| 1.4.3 脱落酸与乙烯的关系和相互作用 | 第36-38页 |
| 1.4.4 脱落酸对角质层形成的调控 | 第38页 |
| 1.5 研究意义和目的 | 第38-39页 |
| 第二章 材料与方法 | 第39-56页 |
| 2.1 试验材料 | 第39-41页 |
| 2.1.1 植物材料、菌株、载体、酶与试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.2 试验主要仪器 | 第40-41页 |
| 2.2 常用培养基及溶液配制 | 第41-42页 |
| 2.2.1 常用培养基配制 | 第41-42页 |
| 2.2.2 常用溶液配制 | 第42页 |
| 2.3 试验方法 | 第42-56页 |
| 2.3.1 生物信息学分析方法 | 第42页 |
| 2.3.2 分子生物学试验方法 | 第42-46页 |
| 2.3.3 RNAi (RNA-interference)转基因株系的获得 | 第46-48页 |
| 2.3.4 病毒诱导的基因沉默(Virus-induced gene silencing,VIGS) | 第48-49页 |
| 2.3.5 外源激素处理 | 第49页 |
| 2.3.6 非生物胁迫处理 | 第49-50页 |
| 2.3.7 基本生理生化指标的测定 | 第50-52页 |
| 2.3.8 蛋白质相关试验 | 第52-55页 |
| 2.3.9 启动子活性试验 | 第55页 |
| 2.3.10 转录组测序 | 第55-56页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第56-110页 |
| 3.1 ABA从头合成与降解关键酶基因对樱桃与番茄果实成熟的调控 | 第56-69页 |
| 3.1.1 樱桃果实中PacCYP707A1的表达模式 | 第56-57页 |
| 3.1.2 樱桃果实PacCYP707A1基因沉默对成熟相关表型的影响 | 第57-58页 |
| 3.1.3 樱桃果实PacCYP707A1基因沉默对ABA及花青素生物合成基因表达的影响 | 第58-59页 |
| 3.1.4 PacCYP707A1沉默影响离体樱桃果实的失水率 | 第59-61页 |
| 3.1.5 番茄果实中ABA代谢基因的表达模式 | 第61页 |
| 3.1.6 SlNCED1与SlCYP707A2对番茄果实成熟有相反的作用 | 第61-64页 |
| 3.1.7 SlNCED1和SlCYP707A2沉默果实中ABA相关基因的表达发生变化 | 第64页 |
| 3.1.8 SlNCED1和SlCYP707A2沉默果实中成熟相关基因的表达发生变化 | 第64-66页 |
| 3.1.9 SlNCED1调控离体番茄果实的失水率 | 第66页 |
| 3.1.10 讨论 | 第66-68页 |
| 3.1.11 小结 | 第68-69页 |
| 3.2 ABA葡萄糖基转移酶S1UGT75C1调控番茄果实成熟 | 第69-81页 |
| 3.2.1 SlUGTs的体外催化活性 | 第69-71页 |
| 3.2.2 SlUGT75Cl-RNAi转基因株系的获得 | 第71页 |
| 3.2.3 SlUGT75C1-RNAi果实中ABA内稳态发生变化 | 第71-73页 |
| 3.2.4 SlUGT75C1-RNAi影响番茄果实的成熟和番茄红素的积累 | 第73-75页 |
| 3.2.5 SlUGT75C1-RNAi植株具有ABA高度积累表型 | 第75-76页 |
| 3.2.6 SlUGT75C1-RNAi植株的抗旱性增强 | 第76-77页 |
| 3.2.7 SlUGT75C1-RNAi植株幼果果型发生变化 | 第77-79页 |
| 3.2.8 SlUGT75C1的启动子活性 | 第79页 |
| 3.2.9 讨论 | 第79-80页 |
| 3.2.10 小结 | 第80-81页 |
| 3.3 SlPP2C3参与番茄ABA信号转导和果实成熟 | 第81-110页 |
| 3.3.1 番茄组APP2Cs的鉴定与系统发育分析 | 第81-84页 |
| 3.3.2 SlPP2Cs蛋白质的结构 | 第84页 |
| 3.3.3 SlPP2Cs基因的表达模式 | 第84-87页 |
| 3.3.4 SlPP2Cs基因对内源ABA变化和外源ABA处理的响应 | 第87-88页 |
| 3.3.5 SlPP2Cs蛋白的亚细胞定位 | 第88-90页 |
| 3.3.6 SlPP2Cs与ABA信号核心组分的互作 | 第90-94页 |
| 3.3.7 SlPP2C3-RNAi转基因植株的获得 | 第94-95页 |
| 3.3.8 SlPP2C3-RNAi植株营养生长表型 | 第95页 |
| 3.3.9 SlPP2C3-RNAi植株的抗旱性增强 | 第95-97页 |
| 3.3.10 SlPP2C3-RNAi株系种子与幼苗的ABA敏感性增强 | 第97-99页 |
| 3.3.11 SlPP2C3影响番茄果实的成熟 | 第99页 |
| 3.3.12 SlPP2C3调控果实乙烯生物合成和感知 | 第99-101页 |
| 3.3.13 SlPP2C3调控离体番茄果实的失水率 | 第101-102页 |
| 3.3.14 SlPP2C3调控番茄果实表皮角质层发育 | 第102-103页 |
| 3.3.15 转录组测序揭示SlPP2C3信号途径下游基因 | 第103-107页 |
| 3.3.16 讨论 | 第107-108页 |
| 3.3.17 小结 | 第108-110页 |
| 第四章 结论 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-135页 |
| 致谢 | 第135-136页 |
| 附录 | 第136-147页 |
| 作者简历 | 第147-148页 |
