| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 材料和方法 | 第16-29页 |
| 1 动物模型的建立 | 第16-18页 |
| 1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2 手术器械及耗材 | 第16页 |
| 1.3 实验主要试剂 | 第16页 |
| 1.4 实验仪器 | 第16页 |
| 1.5 实验动物模型建立 | 第16-18页 |
| 1.5.1 动物分组 | 第16-17页 |
| 1.5.2 动物麻醉方式 | 第17页 |
| 1.5.3 手术操作步骤 | 第17-18页 |
| 1.5.4 实验标本制备 | 第18页 |
| 2 肠黏膜病理学观察 | 第18-20页 |
| 2.1 实验试剂 | 第18-19页 |
| 2.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.3 实验耗材 | 第19页 |
| 2.4 肠黏膜病理学检测 | 第19-20页 |
| 2.4.1 切片制作步骤 | 第19页 |
| 2.4.2 肠黏膜组织 HE 染色 | 第19-20页 |
| 2.4.3 肠黏膜形态学观察 | 第20页 |
| 3 胆汁酸膜受体 GP-BAR1 的检测 | 第20-24页 |
| 3.1 实验器材 | 第20页 |
| 3.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 3.3 实验耗材 | 第21页 |
| 3.4 实验方法步骤 | 第21-24页 |
| 3.4.1 BCA 试剂盒提取肠黏膜组织蛋白 | 第21-22页 |
| 3.4.2 试剂配制 | 第22页 |
| 3.4.3 SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝胶电泳) | 第22-24页 |
| 3.5 图像处理 | 第24页 |
| 3.6 统计方法 | 第24页 |
| 4 胆汁酸膜受体 GP-BAR1 mRNA 的测定 | 第24-29页 |
| 4.1 实验相关仪器 | 第24-25页 |
| 4.2 实验主要试剂 | 第25-26页 |
| 4.3 实验耗材 | 第26页 |
| 4.4 实验方法 | 第26-28页 |
| 4.4.1 组织中提取总 RNA 超净台中完成总 RNA 提取，防止 RNase 污染 | 第26页 |
| 4.4.2 cDNA 合成 | 第26-27页 |
| 4.4.3 逆转录 PCR（RT-PCR）及凝胶电泳 | 第27-28页 |
| 4.5 图像处理 | 第28页 |
| 4.6 统计学方法 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-34页 |
| 1 实验动物基本情况观察 | 第29-30页 |
| 1.1 四组大鼠基本状态观察 | 第29页 |
| 1.2 四组大鼠大小便观察 | 第29-30页 |
| 1.3 四组大鼠存活情况 | 第30页 |
| 2 四组大鼠回肠组织 HE 染色结果比较 | 第30-32页 |
| 3 肠黏膜组织 GP-BAR1 受体表达结果 | 第32页 |
| 4 胆汁酸膜受体 GP-BAR1mRNA 表达结果 | 第32-34页 |
| 讨论 | 第34-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-46页 |
| 综述 | 第46-64页 |
| 摘要 | 第46页 |
| 1.引言 | 第46页 |
| 2.GP-BAR1 发现 | 第46-47页 |
| 3.GP-BAR1 基因与结构 | 第47页 |
| 4.GP-BAR1 基因表达分布和调控 | 第47-48页 |
| 5.GP-BAR1 激动剂 | 第48-49页 |
| 6.GP-BAR1 受体活化后跨膜信号转导反应 | 第49页 |
| 7.GP-BAR1 基因敲除小鼠表观特征 | 第49-50页 |
| 8.GP-BAR1 活化的生物效应 | 第50-53页 |
| 8.1 抗炎作用 | 第50页 |
| 8.2 肝胆组织中的表达 | 第50-51页 |
| 8.3 能量平衡和代谢 | 第51-52页 |
| 8.4 细胞增殖、凋亡和生长因子 | 第52页 |
| 8.5 GP-BAR1 在肠组织中表达和作用 | 第52-53页 |
| 9.GP-BAR1 与相关疾病 | 第53-55页 |
| 9.1 代谢紊乱和心血管疾病 | 第53-54页 |
| 9.2 肝代谢紊乱及胰腺功能不全 | 第54页 |
| 9.3 肠道功能紊乱和相关疾病 | 第54-55页 |
| 9.4 消化道肿瘤 | 第55页 |
| 10.结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 主要英文缩略词表 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表的文章情况 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
