| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 细菌光敏色素简介 | 第13-18页 |
| 1.1.1 细菌光敏色素的结构和光异构化 | 第14-15页 |
| 1.1.2 细菌光敏色素的改造和运用 | 第15-16页 |
| 1.1.3 细菌光敏色素的生物学活性研究 | 第16-18页 |
| 1.2 平行基因转移 | 第18-23页 |
| 1.2.1 接合概念及反应过程 | 第18-20页 |
| 1.2.2 转化概念及反应过程 | 第20-21页 |
| 1.2.3 接合和转化反应的调控 | 第21-23页 |
| 1.3 课题研究思路及研究意义 | 第23页 |
| 1.4 课题研究内容及结构组成 | 第23-25页 |
| 第二章 Agp1和Agp2对接合过程的影响 | 第25-53页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 质粒及菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 培养基配制 | 第25-26页 |
| 2.1.3 引物 | 第26-27页 |
| 2.2 实验仪器 | 第27页 |
| 2.3 实验原理 | 第27-28页 |
| 2.4 实验过程 | 第28-36页 |
| 2.4.1 A. fabrum C58菌株改造 | 第28-34页 |
| 2.4.2 野生型及突变体A. fabrum C58菌株胞内细菌光敏色素吸收差谱检测 | 第34页 |
| 2.4.3 A. fabrum C58供体菌和受体菌之间接合的检测 | 第34-36页 |
| 2.5 实验结果 | 第36-48页 |
| 2.5.1 野生型及突变体A. fabrum C58菌株鉴定 | 第36-38页 |
| 2.5.2 含有pTiC58质粒的A. fabrum C58菌株中Agp1、Agp2对接合反应的影响 | 第38-40页 |
| 2.5.3 pTiC58缺失的A. fabrum C58中Agp1、Agp2对接合反应的影响 | 第40-45页 |
| 2.5.4 Agp1、Agp2影响接合反应的机理初步探讨 | 第45-48页 |
| 2.6 小结与讨论 | 第48-53页 |
| 第三章 Agp1和Agp2对于转化的影响 | 第53-71页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第53-55页 |
| 3.1.1 菌株及植物细胞 | 第53-54页 |
| 3.1.2 培养基及试剂配制 | 第54-55页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第55页 |
| 3.2 实验过程 | 第55-58页 |
| 3.2.1 根癌农杆菌介导的BY-2 细胞瞬时转化 | 第55-56页 |
| 3.2.2 GUS活性分析 | 第56-58页 |
| 3.2.3 A. fabrum C58菌株的能动性检测 | 第58页 |
| 3.3 实验结果 | 第58-68页 |
| 3.3.1 Agp1、Agp2在A. fabrum C58菌株侵染BY-2 细胞过程中的作用 | 第58-61页 |
| 3.3.2 Agp1和Agp2对于A. fabrum C58菌株能动性的影响 | 第61-66页 |
| 3.3.3 Agp1、Agp2影响转化反应的机理初步探讨 | 第66-68页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第68-71页 |
| 第四章 运用FRET研究全长的Agp1在光转化过程中的结构变化 | 第71-84页 |
| 4.1 实验材料 | 第71-72页 |
| 4.1.1 质粒及菌株 | 第71页 |
| 4.1.2 溶液配制 | 第71-72页 |
| 4.2 实验设备 | 第72页 |
| 4.3 实验过程 | 第72-75页 |
| 4.3.1 蛋白表达与纯化 | 第72-74页 |
| 4.3.2 荧光标记的Agp1突变体蛋白组氨酸激酶活性检测 | 第74页 |
| 4.3.3 荧光标记的Agp1突变体蛋白吸收光谱和荧光光谱检测 | 第74-75页 |
| 4.4 实验结果 | 第75-82页 |
| 4.4.1 Agp1全蛋白组装及荧光标记 | 第75-77页 |
| 4.4.2 荧光标记后的Agp1全蛋白活性分析 | 第77-78页 |
| 4.4.3 荧光标记后的Agp1全蛋白荧光光谱检测 | 第78-82页 |
| 4.5 小结与讨论 | 第82-84页 |
| 第五章 结论与展望 | 第84-87页 |
| 5.1 结论 | 第84-85页 |
| 5.2 展望 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 附录 | 第99-104页 |
| 攻读博士学位期间取得的成果 | 第104-105页 |
