| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-18页 |
| ·肉食螨的分类研究概况 | 第9-10页 |
| ·蜱螨分子系统学研究概况 | 第10-15页 |
| ·分子系统学研究概况 | 第11页 |
| ·分子系统学在蜱螨中的应用概况 | 第11-14页 |
| ·核糖体rRNA在蜱螨学中的研究应用 | 第14-15页 |
| ·系统发育树的构建方法 | 第15-16页 |
| ·单头螨DNA提取的研究 | 第16-17页 |
| ·Chelex-100螯合树脂 | 第16页 |
| ·单头蜗DNA提取探索的意义 | 第16-17页 |
| ·本论文研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 第二章 Chelex-100法提取单头螨DNA的探索 | 第18-27页 |
| ·材料与方法 | 第18-20页 |
| ·样品采集 | 第18-19页 |
| ·主要试剂及配制 | 第19页 |
| ·仪器 | 第19-20页 |
| ·总基因组提取 | 第20-21页 |
| ·传统方法—酚氯仿法 | 第20-21页 |
| ·改进方法—Chelex-100方法从单头螨中提取DNA | 第21页 |
| ·实验处理 | 第21页 |
| ·传统酚氯仿提取法与Chelex-100抽提法效果对比 | 第21页 |
| ·4种螨Chelex-100抽提法效果探索 | 第21页 |
| ·螨在不同保存条件下Chelex-100抽提法效果对比 | 第21页 |
| ·单头螨Chelex-100抽提法所获得模板保存时间探索 | 第21页 |
| ·C01与ITS的PCR扩增 | 第21-22页 |
| ·结果与分析 | 第22-25页 |
| ·传统方法与Chelex-100方法对比 | 第23页 |
| ·4种螨Chelex-100抽提法效果探索 | 第23-24页 |
| ·螨在不同保存条件下Chelex-100抽提法效果对比 | 第24-25页 |
| ·单头螨Chelex-100抽提法所获得模板保存时间的研究 | 第25页 |
| ·小结与讨论 | 第25-27页 |
| 第三章 常见肉食螨核糖体18SrRNA基因序列测定及系统发育分析 | 第27-39页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·肉食螨的采集 | 第27-28页 |
| ·肉食螨鉴定及分离 | 第28页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| ·总基因组提取 | 第28-29页 |
| ·18SrRNA-PCR扩增体系与条件 | 第29页 |
| ·扩增产物的检测 | 第29页 |
| ·PCR产物的纯化及目的片段序列的测定 | 第29-30页 |
| ·序列结果分析 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-37页 |
| ·肉食螨18SrRNA扩增结果 | 第30-32页 |
| ·肉食螨18SrRNA基因序列比较分析 | 第32-35页 |
| ·系统关系分析 | 第35-37页 |
| ·小结与讨论 | 第37-39页 |
| ·肉食螨科7种肉食螨系统关系分析 | 第37-38页 |
| ·马六甲肉食螨18SrRNA地理种群研究 | 第38-39页 |
| 第四章 常见肉食螨核糖体28SrRNA基因序列测定及系统发育分析 | 第39-48页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-40页 |
| ·总DNA提取 | 第39页 |
| ·28SrDNA-PCR扩增体系与条件 | 第39-40页 |
| ·扩增产物的检测 | 第40页 |
| ·PCR产物的纯化及目的片段序列的测定 | 第40页 |
| ·序列结果分析 | 第40页 |
| ·结果与分析 | 第40-46页 |
| ·肉食螨28SrRNA基因扩增结果 | 第40-42页 |
| ·4种肉食螨28SrRNA基因序列比较分析 | 第42-45页 |
| ·分子系统树的构建 | 第45-46页 |
| ·小结与讨论 | 第46-48页 |
| ·肉食螨科4种肉食螨系统关系分析 | 第47页 |
| ·马六甲肉食螨28SrRNA地理种群研究 | 第47-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 附录A 肉食螨部分种类18SrRNA基因测序荧光峰图 | 第55-57页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第57页 |
