| 中文摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 缩略语/符号说明 | 第16-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 研究现状、成果 | 第18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-21页 |
| 一、材料和方法 | 第21-45页 |
| 1 动物实验 | 第21-45页 |
| 1.1.实验动物 | 第21页 |
| 1.2.主要试剂及试剂盒 | 第21-26页 |
| 1.3.主要实验仪器及设备 | 第26-27页 |
| 1.4.实验动物及实验分组 | 第27-28页 |
| 1.5.动物实验仪器及实验大鼠造模方法 | 第28-29页 |
| 1.6.大鼠神经功能缺陷综合评分 | 第29-30页 |
| 1.7.脑组织甲苯胺蓝染色实验 | 第30页 |
| 1.8.Western-blot测 定大鼠皮层RIPK-1, RIPK-3, FADD, PARP-1, Caspase-3, Caspase-8, TNF-α, TRAIL, and FasL的表达 | 第30-33页 |
| 1.9.Real-time PCR步骤 | 第33-36页 |
| 1.10.HE染色观察脑组织损伤程度 | 第36-37页 |
| 1.11.脑组织免疫组化实验方法及步骤 | 第37-38页 |
| 1.12.脑组织DNA免疫荧光实验方法及步骤 | 第38-39页 |
| 1.13.透射电子显微镜检测脑组织坏死后亚细胞结构变化 | 第39-40页 |
| 1.14.Fluoro-Jade.C (FJC)脑组织染色观察神经元坏死情况 | 第40页 |
| 1.15.多普勒大鼠脑组织脑血流量检测 | 第40-41页 |
| 1.16.统计学处理 | 第41页 |
| 1.17.实验细胞 | 第41页 |
| 1.18.细胞实验主要试剂 | 第41页 |
| 1.19.溶液配制 | 第41-42页 |
| 1.20.实验仪器及耗材 | 第42-43页 |
| 1.21.细胞实验 | 第43-44页 |
| 1.22.统计学方法 | 第44-45页 |
| 二、结果 | 第45-64页 |
| 2.1 大鼠颅脑创伤模型建立 | 第45-46页 |
| 2.1.1.大鼠颅脑创伤后体征评价 | 第46页 |
| 2.1.2.伤后 24h、48h神经功能评分结果 | 第46页 |
| 2.2.HT治疗对蛋白及mRNA表达水平的影响 | 第46-50页 |
| 2.3.透射电镜观察大鼠TBI造模后神经元胞核及线粒体结构 | 第50-51页 |
| 2.4.亚低温治疗TBI大鼠可减轻皮层损伤灶，降低神经细胞凋亡 | 第51-52页 |
| 2.5.脑组织切片行甲苯胺蓝染色评估打击速率对脑组织损伤的影响 | 第52-54页 |
| 2.6.FJC染色阳性细胞评价TBI大鼠造模后神经元变性坏死 | 第54-55页 |
| 2.7.脑组织内RIPK-1, RIPK-3, FADD, PARP-1, Caspase-3, Caspase-8, TNF-α, andFasL免疫组织化学染色结果 | 第55-56页 |
| 2.8.脑组织内TRAIL+PARP-1+DNA免疫荧光三染 | 第56-57页 |
| 2.9.多普勒超声脑血流量检测结果 | 第57-58页 |
| 2.10.细胞实验结果 | 第58-64页 |
| 2.10.1.细胞实验所用实验仪器及设备 | 第58-59页 |
| 2.10.2.SH-SY5Y实验细胞培养基形态观察 | 第59-60页 |
| 2.10.3.应用CIC-II梯度打击SH-SY5Y细胞形态学观察及PI免疫荧光染色 | 第60-62页 |
| 2.10.4.PI染色应用流式细胞术（Flow Cytometry FCM）观察记录SH-SY5Y细胞凋亡周期 | 第62-64页 |
| 三.讨论 | 第64-69页 |
| 3.1.颅脑创伤及可控性皮质损伤装置建立颅脑创伤模型 | 第64页 |
| 3.2.TBI与坏死性凋亡通路 | 第64页 |
| 3.3.亚低温阻断TBI后细胞坏死性凋亡通路 | 第64-65页 |
| 3.4.RIPK-1 与坏死性凋亡通路 | 第65-66页 |
| 3.5.RIPK-1–RIPK-3 坏死性凋亡诱导蛋白复合体调节程序性坏死受上游信号分子调控 | 第66-67页 |
| 3.6.TBI后FADD在RIPK-1 介导的坏死性凋亡通路中的作用 | 第67-69页 |
| 四.结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第75-76页 |
| 综述 | 第76-83页 |
| 综述参考文献 | 第80-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
