| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 一 文献综述 | 第16-37页 |
| 1.1 植物类胡萝卜素积累调控机理研究进展 | 第16-23页 |
| 1.1.1 类胡萝卜素生物合成途径基因调控 | 第16-19页 |
| 1.1.2 光信号调控途径 | 第19-20页 |
| 1.1.3 调节基因调控 | 第20-21页 |
| 1.1.4 表观调节机制 | 第21页 |
| 1.1.5 类胡萝卜素的降解和转化 | 第21-22页 |
| 1.1.6 类胡萝卜素积累的存储途径 | 第22-23页 |
| 1.2 类胡萝卜素积累基因定位、克隆和功能分析相关技术研究进展 | 第23-27页 |
| 1.2.1 SSR和In Del标记 | 第23-24页 |
| 1.2.2 类胡萝卜素组分及基因表达分析研究进展 | 第24-25页 |
| 1.2.3 类胡萝卜素合成基因功能的研究方法 | 第25-26页 |
| 1.2.4 转录组分析技术 | 第26-27页 |
| 1.3 橙色叶球大白菜类胡萝卜素积累的研究现状 | 第27-28页 |
| 1.4 核糖体蛋白起源、分类和作用 | 第28-31页 |
| 1.4.1 核糖体蛋白的起源、分类和组分 | 第28-29页 |
| 1.4.2 核糖体蛋白突变体对器官发育的影响 | 第29-30页 |
| 1.4.3 质体核糖体突变对生长和发育的影响 | 第30页 |
| 1.4.4 核糖体蛋白在胁迫反应中的作用 | 第30-31页 |
| 1.5 核糖体蛋白调控植物发育机理研究进展 | 第31-36页 |
| 1.5.1 核糖体蛋白调节植物发育模型 | 第31-33页 |
| 1.5.2 核糖体蛋白的修饰 | 第33页 |
| 1.5.3 上游因子调控核糖体蛋白基因的表达 | 第33-34页 |
| 1.5.4 uORFs调节生长素相关核糖体蛋白的表达 | 第34页 |
| 1.5.5 核糖体蛋白突变影响核糖体的生物合成 | 第34-36页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第36-37页 |
| 二 材料与方法 | 第37-44页 |
| 2.1 材料 | 第37页 |
| 2.1.1 大白菜材料及作图群体构建 | 第37页 |
| 2.1.2 拟南芥材料及作图群体构建 | 第37页 |
| 2.2 方法 | 第37-44页 |
| 2.2.1 类胡萝卜素的提取和分析 | 第37-38页 |
| 2.2.2 叶绿素提取及定量 | 第38页 |
| 2.2.3 分子标记开发 | 第38页 |
| 2.2.4 遗传连锁分析 | 第38页 |
| 2.2.5 候选基因的预测 | 第38页 |
| 2.2.6 候选基因正义表达载体的构建 | 第38-39页 |
| 2.2.7 候选基因启动子GUS表达载体的构建 | 第39页 |
| 2.2.8 GFP表达载体的构建 | 第39页 |
| 2.2.9 拟南芥转化 | 第39-40页 |
| 2.2.10 基因表达水平检测 | 第40-41页 |
| 2.2.11 Western杂交 | 第41-42页 |
| 2.2.12 RNA-seq分析 | 第42页 |
| 2.2.13 Northern杂交 | 第42页 |
| 2.2.14 蛋白组学分析 | 第42-44页 |
| 三 结果与分析 | 第44-80页 |
| 3.1 橙色叶球大白菜类胡萝卜素积累基因的图位克隆和功能分析 | 第44-60页 |
| 3.1.1 橙色叶球大白菜表型观察分析 | 第44-45页 |
| 3.1.2 橙色叶球的遗传规律分析 | 第45-46页 |
| 3.1.3 橙色叶球基因的粗定位 | 第46-47页 |
| 3.1.4 橙色叶球基因的精细定位 | 第47-48页 |
| 3.1.5 橙色叶球候选基因的确定 | 第48-49页 |
| 3.1.6 橙色叶球大白菜类胡萝卜素分析 | 第49-51页 |
| 3.1.7 BrCRITSO基因的克隆及序列分析 | 第51-52页 |
| 3.1.8 大白菜橙色叶球功能标记的开发 | 第52-53页 |
| 3.1.9 BrCRITSO的进化分析 | 第53-54页 |
| 3.1.10 类胡萝卜素合成相关基因的表达分析 | 第54-56页 |
| 3.1.11 Brcrtiso基因功能分析 | 第56-57页 |
| 3.1.12 橙色叶球大白菜转录组水平差异分析 | 第57-60页 |
| 3.2 拟南芥质体核糖体蛋白基因PRPS5的克隆与功能分析 | 第60-80页 |
| 3.2.1 拟南芥黄叶突变体表型观察分析 | 第60-61页 |
| 3.2.2 突变体中色素组分和含量分析 | 第61-62页 |
| 3.2.3 突变基因在发育中的作用分析 | 第62-65页 |
| 3.2.4 PRPS5基因克隆 | 第65-66页 |
| 3.2.5 表达水平分析 | 第66页 |
| 3.2.6 功能互补分析 | 第66-67页 |
| 3.2.7 PRPS5结构分析 | 第67-68页 |
| 3.2.8 PRPS5蛋白的亚细胞定位 | 第68-69页 |
| 3.2.9 叶绿体rRNA加工分析 | 第69-72页 |
| 3.2.10 光合作用相关基因的表达分析 | 第72页 |
| 3.2.11 叶绿体相关蛋白的表达分析 | 第72-73页 |
| 3.2.12 基于iTRAQ的比较蛋白组学分析 | 第73-80页 |
| 四 讨论 | 第80-87页 |
| 4.1 图位克隆基因需要注意的问题及一些新的认识 | 第80页 |
| 4.2 Brctiso中大的自然插入是导致橙色叶球的关键原因 | 第80-81页 |
| 4.3 BrCRITSO基因突变影响了一些特异的基因和进程 | 第81-83页 |
| 4.4 用于橙色叶球MAS的共显性新标记的开发及应用 | 第83页 |
| 4.5 PRPS5在叶绿体 16SrRNA加工中起着重要的作用 | 第83-84页 |
| 4.6 prps5-1 中大量特异蛋白表达下调可能是导致突变表型的关键原因 | 第84-85页 |
| 4.7 PRPS5可能参与胁迫反应 | 第85-87页 |
| 五 结论与展望 | 第87-89页 |
| 5.1 结论 | 第87页 |
| 5.2 创新点 | 第87页 |
| 5.3 展望 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-107页 |
| 附录 | 第107-128页 |
| 缩略词 | 第128-130页 |
| 致谢 | 第130-131页 |
| 作者简介 | 第131页 |
