| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 引言 | 第10-15页 |
| 1.1 石油污染危害及现状 | 第10页 |
| 1.2 微生物降解石油烃的概述 | 第10-14页 |
| 1.2.1 生物降解优势及现状 | 第10-11页 |
| 1.2.2 国内外关于微生物降解石油烃的研究现状 | 第11-13页 |
| 1.2.3 微生物降解烷烃过程中的相关酶系 | 第13-14页 |
| 1.3 本研究的目的意义 | 第14-15页 |
| 第二章 烷烃降解菌的分离筛选与初步鉴定 | 第15-23页 |
| 2.1 前言 | 第15页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第15-17页 |
| 2.2.1 培养基与试剂 | 第15页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.2.3 烷烃降解菌的富集、分离与纯化 | 第16页 |
| 2.2.4 烷烃降解菌的 16S r RNA序列扩增及测序 | 第16-17页 |
| 2.2.5 烷烃标准曲线的建立 | 第17页 |
| 2.2.6 优势降解菌株的筛选以及降解能力的初步评估 | 第17页 |
| 2.3 结果与分析 | 第17-22页 |
| 2.3.1 烷烃降解菌的分离筛选及初步鉴定 | 第17-19页 |
| 2.3.2 烷烃降解菌的 16S rRNA基因序列构建的系统发育进化树 | 第19-20页 |
| 2.3.3 正十六烷标准曲线的建立 | 第20-21页 |
| 2.3.4 优势降解菌株的筛选以及降解能力的初步评估 | 第21-22页 |
| 2.4 本章小结 | 第22-23页 |
| 第三章 两株拟新种降解菌的多相分类 | 第23-42页 |
| 3.1 前言 | 第23-24页 |
| 3.2 材料和方法 | 第24-29页 |
| 3.2.1 供试菌株 | 第24页 |
| 3.2.2 药品和试剂 | 第24-25页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第25页 |
| 3.2.4 表型特征及生理生化分析 | 第25-26页 |
| 3.2.5 Biolog自动微生物系统鉴定 | 第26页 |
| 3.2.6 菌株生长条件的测定 | 第26页 |
| 3.2.7 化学分类特征分析 | 第26-27页 |
| 3.2.8 16S rRNA基因序列分析 | 第27-28页 |
| 3.2.9 gyrB与rpoB的基因序列分析 | 第28页 |
| 3.2.10 基因组DNA-DNA杂交以及G+C mol%含量的测定 | 第28-29页 |
| 3.3 结果与分析 | 第29-41页 |
| 3.3.1 菌株的表型特征 | 第29-30页 |
| 3.3.2 菌株间特征的差异比较 | 第30-33页 |
| 3.3.3 菌株极性脂的组成 | 第33-34页 |
| 3.3.4 菌株呼吸醌的组成 | 第34页 |
| 3.3.5 菌株间脂肪酸成分差异比较 | 第34-37页 |
| 3.3.6 16S rRNA及相关基因序列分析 | 第37-40页 |
| 3.3.7 基因组DNA的G+C mol%含量分析 | 第40页 |
| 3.3.8 DNA-DNA杂交结果的分 | 第40-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 烷烃降解菌LAM1007的降解特性 | 第42-51页 |
| 4.1 前言 | 第42页 |
| 4.2 材料与方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 主要试剂及仪器 | 第42-43页 |
| 4.2.2 正十六烷降解特及柴油、液体石蜡降解能力初步评估 | 第43页 |
| 4.2.3 正十六烷、柴油及液体石蜡的萃取与测定方法 | 第43-44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-50页 |
| 4.3.1 温度对菌株LAM1007降解正十六烷的影响 | 第44页 |
| 4.3.2 初始p H对菌株LAM1007降解正十六烷的影响 | 第44-45页 |
| 4.3.3 接种量对菌株LAM1007降解正十六烷的影响 | 第45页 |
| 4.3.4 转速对菌株LAM1007降解正十六烷的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.5 不同初始浓度的正十六烷对菌株LAM1007降解效率的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.6 菌株LAM1007生长量与降解率随时间变化的关系 | 第47页 |
| 4.3.7 菌株降解柴油以及液体石蜡能力的初步评估 | 第47-50页 |
| 4.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 第五章 ALKB基因的克隆与表达 | 第51-61页 |
| 5.1 前言 | 第51页 |
| 5.2 实验材料和方法 | 第51-56页 |
| 5.2.1 菌株和质粒 | 第51页 |
| 5.2.2 主要试剂、仪器及培养基 | 第51-52页 |
| 5.2.3 Acinetobacter LAM1007基因组的提取 | 第52页 |
| 5.2.4 alk B功能基因的扩增及纯化 | 第52-53页 |
| 5.2.5 质粒p ET28a的提取、双酶切和纯化 | 第53页 |
| 5.2.6 alk B基因的双酶切和纯化 | 第53-54页 |
| 5.2.7 重组质粒p ET28a-alk B的构建 | 第54-55页 |
| 5.2.8 重组质粒的提取以及双酶切验证 | 第55页 |
| 5.2.9 表达系统p ET28a-alk B /E.coli BL21的构建 | 第55页 |
| 5.2.10 重组alk B表达条件的优化 | 第55-56页 |
| 5.3 实验结果 | 第56-60页 |
| 5.3.1 alk B基因的扩增 | 第56-57页 |
| 5.3.2 重组质粒p ET-28a提取和双酶切验证 | 第57-58页 |
| 5.3.3 表达系统p ET28a-alk B/E.coli BL21构建以及测序 | 第58-59页 |
| 5.3.4 重组alk B的表达 | 第59-60页 |
| 5.4 本章小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-72页 |
| 在读期间发表论文 | 第72-73页 |
| 后记 | 第73页 |
