| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 主要英文缩略词 | 第18-19页 |
| 第1章 前言 | 第19-21页 |
| 第2章 实验材料 | 第21-25页 |
| 2.1 细胞株 | 第21页 |
| 2.2 主要药品与试剂 | 第21-22页 |
| 2.3 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.4 试剂配制 | 第23-25页 |
| 第3章 实验方法 | 第25-35页 |
| 3.1 HUVECs的传代培养、冻存与复苏 | 第25-26页 |
| 3.1.1 细胞的传代培养 | 第25页 |
| 3.1.2 细胞的冻存与复苏 | 第25-26页 |
| 3.2 实验分组及药物处理 | 第26-28页 |
| 3.2.1 PO刺激HUVECs氧化应激损伤模型建立 | 第26-27页 |
| 3.2.2 Gen对PO刺激HUVECs氧化应激损伤保护作用观察 | 第27页 |
| 3.2.3 Gen抗PO氧化应激损伤作用与Notch1信号通路的关系初探 | 第27-28页 |
| 3.3 CCK8法检测细胞活力 | 第28页 |
| 3.3.1 检测原理 | 第28页 |
| 3.3.2 操作步骤 | 第28页 |
| 3.4 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第28-29页 |
| 3.4.1 实验原理 | 第28页 |
| 3.4.2 实验步骤 | 第28-29页 |
| 3.4.3 计算公式 | 第29页 |
| 3.5 丙二醛（MDA）含量测定 | 第29-30页 |
| 3.5.1 实验原理： | 第29页 |
| 3.5.2 实验操作步骤 | 第29-30页 |
| 3.5.3 MDA含量计算公式 | 第30页 |
| 3.6 乳酸脱氢酶(LDH)含量测定 | 第30-31页 |
| 3.6.1 LDH测定原理: | 第30-31页 |
| 3.6.2 实验操作步骤 | 第31页 |
| 3.6.3 LDH含量计算公式 | 第31页 |
| 3.7 Western blot检测相关蛋白表达 | 第31-34页 |
| 3.7.1 蛋白质样品制备步骤 | 第31页 |
| 3.7.2 BCA试剂盒蛋白定量 | 第31-32页 |
| 3.7.3 SDS-PAGE配制 | 第32-33页 |
| 3.7.4 电泳 | 第33页 |
| 3.7.5 湿电转移仪进行转膜 | 第33-34页 |
| 3.7.6 免疫结合 | 第34页 |
| 3.7.7 化学发光 | 第34页 |
| 3.7.8 凝胶图像分析 | 第34页 |
| 3.8 数据分析 | 第34-35页 |
| 第4章 实验结果 | 第35-49页 |
| 4.1 PO对HUVECs氧化应激损伤作用观察 | 第35-40页 |
| 4.1.1 PO刺激HUVECs氧化应激损伤量效关系 | 第35-37页 |
| 4.1.2 PO对HUVECs氧化应激损伤的时效关系 | 第37-40页 |
| 4.2 Gen干预PO刺激HUVECs致氧化应激损伤的量效、时效关系 | 第40-44页 |
| 4.2.1 Gen干预PO刺激HUVECs致氧化应激损伤的量效关系 | 第40-42页 |
| 4.2.2 Gen对PO致HUVECs氧化应激损伤保护作用的时效关系 | 第42-44页 |
| 4.3 Gen抗PO刺激HUVECs与Notch1信号通路的关系 | 第44-49页 |
| 4.3.1 阻断Notch1信号通路后培养的HUVECs形态变化 | 第44-45页 |
| 4.3.2 阻断Notch1信号通路细胞活力变化 | 第45页 |
| 4.3.3 阻断Notch1信号通路后细胞培养液中SOD、MDA、LDH含量变化 | 第45-46页 |
| 4.3.4 阻断Notch1信号通路后各组细胞相关蛋白表达 | 第46-49页 |
| 第5章 讨论 | 第49-55页 |
| 第6章 结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 文献综述 染料木素心血管保护作用及机制研究 | 第63-81页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 附录 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
