| 中文摘要 | 第12-14页 |
| ABSTRACT | 第14-16页 |
| 第一章 综述 | 第17-26页 |
| 1.1 植物中气体信号分子H_2S的研究进展 | 第17-24页 |
| 1.1.1 植物内源H_2S的生理功能 | 第17-19页 |
| 1.1.2 植物内源H_2S的产生 | 第19-21页 |
| 1.1.3 植物内源H_2S的检测 | 第21-23页 |
| 1.1.4 目前存在的问题与展望 | 第23-24页 |
| 1.2 本课题的研究内容及目的意义 | 第24-26页 |
| 1.2.1 本课题的主要研究内容 | 第24页 |
| 1.2.2 本课题的研究目的意义 | 第24-26页 |
| 第二章 H_2S信号和ABA互作调节根生长和气孔运动 | 第26-41页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第26-31页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.2 培养条件与处理方法 | 第27-28页 |
| 2.1.3 RNA提取及qRT-PCR | 第28-31页 |
| 2.1.4 H_2S含量的测定 | 第31页 |
| 2.1.5 气孔开度的测定 | 第31页 |
| 2.1.6 数据统计分析 | 第31页 |
| 2.2 实验结果 | 第31-38页 |
| 2.2.1 ABA对叶片LCD表达量和内源H_2S含量的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.2 H_2S对叶片WRKY18、WRKY40和WRKY60表达量的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.3 H_2S对ABA调控幼苗根生长和气孔运动的影响 | 第33-36页 |
| 2.2.4 H_2S对wrky18wrky40wrky60幼苗根生长和气孔运动的调节 | 第36-38页 |
| 2.3 讨论与结论 | 第38-41页 |
| 第三章 H_2S信号增强叶片光合作用响应干旱胁迫 | 第41-48页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第41-42页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第41页 |
| 3.1.2 培养条件及处理方法 | 第41页 |
| 3.1.3 光合特性相关指标的测定 | 第41-42页 |
| 3.1.4 气孔开度的测定 | 第42页 |
| 3.1.5 叶绿素含量的测定 | 第42页 |
| 3.1.6 透射电镜观察叶绿体超微结构 | 第42页 |
| 3.1.7 数据统计分析 | 第42页 |
| 3.2 实验结果 | 第42-45页 |
| 3.2.1 内源H_2S对幼苗光合特性的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.2 内源H_2S对幼苗气孔开度的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.3 内源H_2S对幼苗叶绿素含量的影响 | 第44页 |
| 3.2.4 内源H_2S对干旱胁迫下叶片叶绿体超微结构的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 讨论与结论 | 第45-48页 |
| 第四章 H_2S调节线粒体能量平衡缓解叶片衰老 | 第48-61页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第48-52页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 4.1.2 培养条件及处理方法 | 第49页 |
| 4.1.3 RNA提取和qRT-PCR | 第49页 |
| 4.1.4 透射电镜观察线粒体超微结构 | 第49页 |
| 4.1.5 植物叶片线粒体的提取与纯化 | 第49-50页 |
| 4.1.6 线粒体肿胀和线粒体活性的测定 | 第50页 |
| 4.1.7 线粒体中ATPase活性和ATP含量的测定 | 第50-51页 |
| 4.1.8 线粒体中Cys含量以及H_2S产率和含量的测定 | 第51-52页 |
| 4.1.9 数据统计分析 | 第52页 |
| 4.2 实验结果 | 第52-58页 |
| 4.2.1 内源H_2S对拟南芥幼苗生长的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.2 内源H_2S对衰老相关基因和ATP合成酶相关基因转录的调节 | 第53-55页 |
| 4.2.3 内源H_2S对干旱胁迫下叶片线粒体超微结构的影响 | 第55-56页 |
| 4.2.4 内源H_2S对线粒体活性、肿胀、ATPase活性和ATP含量的影响 | 第56页 |
| 4.2.5 线粒体中Cys含量以及H_2S产率和含量的分析 | 第56-58页 |
| 4.3 讨论与结论 | 第58-61页 |
| 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简况及联系方式 | 第75-76页 |
