| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第9-15页 |
| 1.1 桑葚和桑葚花色苷 | 第9-10页 |
| 1.1.1 桑葚 | 第9页 |
| 1.1.2 桑葚花色苷 | 第9-10页 |
| 1.2 花色苷的提取方法 | 第10-13页 |
| 1.2.1 溶剂热浸提法 | 第10-11页 |
| 1.2.2 微波辅助提取(MAE) | 第11-12页 |
| 1.2.3 超临界CO_2提取法(SCF) | 第12-13页 |
| 1.3 花色苷稳定性的对比分析 | 第13-14页 |
| 1.3.1 不同条件下热降解稳定性的分析 | 第13页 |
| 1.3.2 利用动力学模型分析对比提取的方法 | 第13-14页 |
| 1.4 研究内容 | 第14页 |
| 1.4.1 研究超临界CO_2法与微波提取法在提取桑葚花色苷效果上的差异 | 第14页 |
| 1.4.2 研究两种方法提取的桑葚花色苷稳定性及热降解动力学常数的差异 | 第14页 |
| 1.5 研究的目的与意义 | 第14-15页 |
| 第二章 微波辅助溶剂法提取桑葚中的花色苷 | 第15-33页 |
| 2.1 材料与方法 | 第15-19页 |
| 2.1.1 试剂及仪器 | 第15-16页 |
| 2.1.2 实验方法及工艺流程 | 第16-19页 |
| 2.2 实验结果与分析 | 第19-25页 |
| 2.2.1 桑葚中还原糖含量及花色苷总量的测定及分析 | 第19-20页 |
| 2.2.2 溶剂热浸提实验结果与分析 | 第20-21页 |
| 2.2.3 微波提取桑葚花色苷的单因素实验结果与分析 | 第21-25页 |
| 2.3 工艺条件优化及相关分析 | 第25-31页 |
| 2.3.1 工艺条件优化结果分析 | 第25-31页 |
| 2.3.2 验证实验 | 第31页 |
| 2.4 章节小结 | 第31-33页 |
| 第三章 超临界CO_2法提取桑葚中的花色苷 | 第33-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第33-35页 |
| 3.1.1 试剂及仪器 | 第33页 |
| 3.1.2 实验方法和工艺流程 | 第33-35页 |
| 3.2 实验结果及分析 | 第35-37页 |
| 3.2.1 提取时间对提取效果的影响 | 第35页 |
| 3.2.2 压力对提取效果的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.3 温度对提取效果的影响 | 第36页 |
| 3.2.4 夹带剂对提取效果的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.5 抗氧化性的测定 | 第37页 |
| 3.3 工艺条件优化及相关分析 | 第37-43页 |
| 3.3.1 工艺条件优化结果分析 | 第37-42页 |
| 3.3.2 验证实验 | 第42-43页 |
| 3.4 章节小结 | 第43-44页 |
| 第四章 不同工艺提取的桑葚花色苷粗提物的稳定性及其热降解动力学模型的研究 | 第44-60页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 4.1.1 试剂及仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.2 热降解稳定性的实验结果与分析 | 第46-51页 |
| 4.2.1 不同工艺提取的花色苷的热降解曲线 | 第46-48页 |
| 4.2.2 糖浓度对花色苷热稳定性的影响 | 第48-51页 |
| 4.3 桑葚花色苷的热降解动力学模型 | 第51-53页 |
| 4.3.1 不同提取工艺提取的桑堪花色苷热降解动力学模型分析 | 第51-53页 |
| 4.3.2 验证实验 | 第53页 |
| 4.4 贮藏稳定性的实验结果与分析 | 第53-58页 |
| 4.4.1 不同酸对贮藏稳定性的影响 | 第53-55页 |
| 4.4.2 光照条件对贮藏稳定性的影响 | 第55页 |
| 4.4.3 有氧条件对贮藏稳定性的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.4 防腐剂对贮藏稳定性的影响 | 第56-58页 |
| 4.5 章节小结 | 第58-60页 |
| 第五章 结论与展望 | 第60-62页 |
| 5.1 结论 | 第60-61页 |
| 5.2 展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
