紫花苜蓿根际氢氧化细菌的分离鉴定及氢气对根际微生物多样性的影响
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 紫花苜蓿的概述 | 第11-12页 |
| 1.3 植物根际促生菌 | 第12-16页 |
| 1.3.1 根际促生菌的概念及分类 | 第12页 |
| 1.3.2 根际促生菌的促生机制 | 第12-14页 |
| 1.3.3 植物根际促生菌的应用 | 第14-16页 |
| 1.4 氢氧化细菌概述 | 第16-20页 |
| 1.4.1 H_2对植物生长的影响 | 第16-17页 |
| 1.4.2 氢氧化细菌的发现 | 第17-18页 |
| 1.4.3 氢氧化细菌的分布 | 第18页 |
| 1.4.4 氢氧化细菌的特性 | 第18页 |
| 1.4.5 氢氧化细菌的分离与培养 | 第18-19页 |
| 1.4.6 氢氧化细菌的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 氢氧化细菌研究现状 | 第20页 |
| 1.6 土壤宏基因组学 | 第20-21页 |
| 1.7 高通量测序技术 | 第21-22页 |
| 1.8 高通量测序的应用 | 第22-23页 |
| 1.9 研究内容、目的及意义 | 第23-25页 |
| 1.9.1 研究内容 | 第23页 |
| 1.9.2 研究目的 | 第23页 |
| 1.9.3 研究意义 | 第23-25页 |
| 第二章 苜蓿根际氢氧化细菌的分离鉴定与促生验证 | 第25-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器和试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 培养基 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 样品采集 | 第26页 |
| 2.2.2 土壤样品中氢氧化细菌的富集与分离 | 第26页 |
| 2.2.3 菌株氢化酶活性的的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.4 菌株自养能力的鉴定 | 第27页 |
| 2.2.5 菌株的形态及生理生化鉴定 | 第27页 |
| 2.2.6 16SrDNA菌种鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.7 小麦促生实验验证 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-36页 |
| 2.3.1 菌株氢化酶活性及自养实验结果 | 第28-30页 |
| 2.3.2 菌株形态学鉴定结果 | 第30-31页 |
| 2.3.3 菌株生理生化鉴定结果 | 第31-32页 |
| 2.3.4 菌种鉴定结果 | 第32-34页 |
| 2.3.5 小麦促生实验结果 | 第34-36页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第36-39页 |
| 2.4.1 氢氧化细菌的分离与纯化 | 第36-37页 |
| 2.4.2 氢氧化细菌的筛选与鉴定 | 第37-38页 |
| 2.4.3 氢氧化细菌的促生验证 | 第38-39页 |
| 第三章 氢气对根际微生物群落多样性的影响 | 第39-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 3.1.1 实验样品 | 第39页 |
| 3.1.2 实验试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.2.1 样品采集 | 第40页 |
| 3.2.2 土壤样品的H_2处理 | 第40-41页 |
| 3.2.3 土壤基因组DNA的提取 | 第41-42页 |
| 3.2.4 测序分析 | 第42页 |
| 3.3 结果与分析 | 第42-48页 |
| 3.3.1 样品序列数的特点 | 第42-43页 |
| 3.3.2 各样品中细菌的群落分布 | 第43-44页 |
| 3.3.3 物种丰度热图 | 第44-45页 |
| 3.3.4 Alpha多样性分析 | 第45-46页 |
| 3.3.5 PCA主成分分析 | 第46-47页 |
| 3.3.6 组间样品差异分析 | 第47-48页 |
| 3.4 结论与讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 问题与展望 | 第49-51页 |
| 4.1 实验中存在的问题与改进 | 第49页 |
| 4.2 展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第63页 |
