| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 中英文缩略语表 | 第13-14页 |
| 1 引言 | 第14-42页 |
| 1.1 甜瓜简介 | 第14-15页 |
| 1.2 基于基因组学方法研究基因功能 | 第15-22页 |
| 1.2.1 基因组学与生物信息学研究概况 | 第15-19页 |
| 1.2.2 植物基因组学研究进展 | 第19-21页 |
| 1.2.3 甜瓜基因组学研究进展 | 第21-22页 |
| 1.3 甜瓜果实发育分子生物学研究进展 | 第22-31页 |
| 1.3.1 乙烯代谢途径对果实发育的作用 | 第22-25页 |
| 1.3.2 细胞壁代谢途径对果实发育的作用 | 第25-28页 |
| 1.3.3 糖代谢途径对果实发育的作用 | 第28页 |
| 1.3.4 其他代谢途径对果实发育的作用 | 第28-31页 |
| 1.4 伐昔洛韦水解酶的研究概况 | 第31-35页 |
| 1.4.1 VACVase研究进展 | 第31-33页 |
| 1.4.2 VACVase的结构特征及催化机制 | 第33-34页 |
| 1.4.3 VACVase的应用 | 第34-35页 |
| 1.5 NYC/SGR的研究概况 | 第35-41页 |
| 1.5.1 持绿突变的发现 | 第35页 |
| 1.5.2 持绿突变体的类型 | 第35-36页 |
| 1.5.3 NYC/SGR对叶绿素代谢的调控 | 第36-41页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第41-42页 |
| 2 材料与方法 | 第42-62页 |
| 2.1 研究材料 | 第42-43页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第42页 |
| 2.1.2 菌种和质粒 | 第42页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第42-43页 |
| 2.2 研究方法 | 第43-62页 |
| 2.2.1 候选基因的全基因组鉴定 | 第43页 |
| 2.2.2 生物信息学分析 | 第43-44页 |
| 2.2.3 引物设计与合成 | 第44-47页 |
| 2.2.4 cDNA克隆 | 第47-50页 |
| 2.2.5 表达谱分析 | 第50-51页 |
| 2.2.6 CmVACVase基因家族亚细胞定位 | 第51-53页 |
| 2.2.7 过表达载体的构建 | 第53-54页 |
| 2.2.8 RNAi载体的构建 | 第54-60页 |
| 2.2.9 瞬时表达 | 第60-62页 |
| 3 结果与分析 | 第62-123页 |
| 3.1 生物信息学分析 | 第62-96页 |
| 3.1.1 CmVACVase基因家族的信息学分析 | 第62-80页 |
| 3.1.2 CmNYC和CmSGRs基因家族的信息学分析 | 第80-96页 |
| 3.2 cDNA克隆 | 第96-101页 |
| 3.2.1 RNA的提取 | 第96页 |
| 3.2.2 cDNA的克隆 | 第96-101页 |
| 3.3 CmVACVase、CmNYC及CmSGRs基因家族的表达谱 | 第101-103页 |
| 3.4 CmVACVasel和CmVACVase2亚细胞定位 | 第103-105页 |
| 3.4.1 亚细胞定位载体的构建 | 第103-104页 |
| 3.4.2 CmVACVasel和CmVACVase2定位于细胞膜 | 第104-105页 |
| 3.5 过表达载体构建 | 第105-108页 |
| 3.6 RNAi载体构建 | 第108-116页 |
| 3.6.1 RNAi中间载体的构建 | 第108-115页 |
| 3.6.2 RNAi表达载体 | 第115-116页 |
| 3.7 目的基因的功能 | 第116-118页 |
| 3.8 叶绿素含量测定 | 第118-119页 |
| 3.9 RT-qPCR检测 | 第119-123页 |
| 3.9.1 总RNA的提取 | 第119页 |
| 3.9.2 目的基因RT-qPCR检测 | 第119-120页 |
| 3.9.3 成熟相关基因的RT-qPCR检测 | 第120-123页 |
| 4 讨论与结论 | 第123-126页 |
| 4.1 讨论 | 第123-125页 |
| 4.1.1 CmVACVase家族的功能 | 第123-124页 |
| 4.1.2 CmNYC和CmSGRs家族的功能 | 第124-125页 |
| 4.2 结论 | 第125-126页 |
| 参考文献 | 第126-137页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
