| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-23页 |
| ·纳米材料简介 | 第13-18页 |
| ·纳米材料的分类 | 第13-15页 |
| ·碳NPs | 第13-14页 |
| ·金属氧化物类NPs | 第14页 |
| ·非金属氧化物NPs | 第14页 |
| ·金属NPs | 第14页 |
| ·量子点(QDs) | 第14-15页 |
| ·纳米材料的特性 | 第15-16页 |
| ·小尺寸效应 | 第15页 |
| ·表面效应 | 第15页 |
| ·体积效应 | 第15-16页 |
| ·量子尺寸效应 | 第16页 |
| ·宏观量子隧道效应 | 第16页 |
| ·纳米材料的应用 | 第16-18页 |
| ·催化剂材料 | 第16-17页 |
| ·传感器材料 | 第17页 |
| ·生物医药领域的应用 | 第17-18页 |
| ·环保领域的应用 | 第18页 |
| ·纳米材料毒性研究进展 | 第18-20页 |
| ·纳米材料的抗菌活性 | 第18页 |
| ·纳米材料的植物毒性 | 第18-19页 |
| ·纳米材料的动物毒性 | 第19-20页 |
| ·纳米材料的细胞毒性 | 第20页 |
| ·研究背景、意义及技术路线 | 第20-23页 |
| ·研究背景 | 第20-21页 |
| ·研究目的和意义 | 第21-22页 |
| ·研究技术路线 | 第22-23页 |
| 第2章 CuO NPs的表征及分散于培养基中的基本性质 | 第23-29页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-25页 |
| ·悬浮液配制 | 第24页 |
| ·粒径测定 | 第24页 |
| ·表面积测定 | 第24页 |
| ·XRD表征 | 第24页 |
| ·CuO NPs悬浮液Zeta电位的测定 | 第24页 |
| ·CuO NPs释放Cu~(2+)含量测定 | 第24-25页 |
| ·实验结果 | 第25-28页 |
| ·纳米CuO的基本理化性质 | 第25-26页 |
| ·纳米CuO在培养基及水中的性质对比 | 第26-27页 |
| ·CuO NPs释放Cu~(2+)含量测定 | 第27-28页 |
| ·本章小结 | 第28-29页 |
| 第3章 CuO NPs对HepG2细胞的损伤作用及致毒机理 | 第29-53页 |
| ·引言 | 第29-30页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·细胞株 | 第30页 |
| ·实验试剂 | 第30页 |
| ·溶液配制 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-42页 |
| ·细胞培养 | 第31-32页 |
| ·CCK-8法检测细胞活性及IC_(50)的测定 | 第32-33页 |
| ·细胞内脂质过氧化物损伤(MDA)的测定 | 第33-36页 |
| ·细胞内蛋白质羰基化的测定 | 第36-37页 |
| ·细胞DNA氧化损伤检测 | 第37-41页 |
| ·单细胞凝胶电泳(SCGE)实验 | 第38-39页 |
| ·细胞内8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)免疫组化分析 | 第39-41页 |
| ·细胞内活性氧类(ROS)的测定 | 第41页 |
| ·NAC对纳米CuO所致HepG2细胞损伤的保护作用 | 第41-42页 |
| ·实验结果 | 第42-49页 |
| ·CuO NPs抑制HepG2细胞增殖及NAC干预作用 | 第42-43页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞内MDA含量升高及NAC干预作用 | 第43-44页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞内PC含量升高及NAC干预作用 | 第44-45页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞DNA链断裂及NAC干预作用 | 第45-46页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞内8-OHdG含量升高及NAC干预作用 | 第46-47页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞内ROS水平升高及NAC干预作用 | 第47-49页 |
| ·讨论 | 第49-53页 |
| 第4章 CuO NPs诱导HepG2细胞周期阻滞及细胞凋亡作用机制 | 第53-71页 |
| ·引言 | 第53-54页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·细胞株 | 第54页 |
| ·实验药品 | 第54页 |
| ·溶液配制 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-62页 |
| ·细胞培养 | 第54-55页 |
| ·纳米CuO诱导HepG2细胞周期阻滞 | 第55-59页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期阻滞 | 第55-56页 |
| ·细胞RNA的提取 | 第56页 |
| ·荧光定量PCR检测 | 第56-59页 |
| ·反转录第一链cDNA | 第56-57页 |
| ·引物的设计 | 第57页 |
| ·Real-time PCR的反应体系 | 第57-58页 |
| ·Real-time PCR的反应程序 | 第58页 |
| ·结果分析 | 第58-59页 |
| ·纳米CuO诱导HepG2细胞凋亡 | 第59-62页 |
| ·JC-1染色检测线粒体膜位电势△φ_m | 第59页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第59-61页 |
| ·细胞RNA的提取 | 第61页 |
| ·荧光定量PCR检测 | 第61-62页 |
| ·反转录第一条链cDNA | 第61页 |
| ·引物的设计 | 第61-62页 |
| ·Real-time PCR的反应体系 | 第62页 |
| ·Real-time PCR的反应程序 | 第62页 |
| ·结果分析 | 第62页 |
| ·实验结果 | 第62-67页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞周期阻滞 | 第62-64页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞凋亡 | 第64-67页 |
| ·讨论 | 第67-71页 |
| 第5章 结论、创新之处和研究展望 | 第71-74页 |
| ·主要结论 | 第71-73页 |
| ·活性氧(ROS)是CuO NPs引起HepG2细胞损伤作用的关键因素 | 第71-72页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞周期阻滞 | 第72页 |
| ·CuO NPs诱导HepG2细胞凋亡的途径是由线粒体所接到的Caspase途径 | 第72-73页 |
| ·创新之处 | 第73页 |
| ·研究展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 攻读硕士学位期间取得研究成果 | 第88-89页 |
| 附录Ⅰ 文中主要缩略语中英文对照表 | 第89-91页 |
| 附录Ⅱ 主要实验仪器与设备 | 第91页 |
