| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| ·海洋天然产物研究的背景和意义 | 第12-14页 |
| ·海洋微生物环肽的研究进展 | 第14-23页 |
| ·海洋来源的生物活性环肽 | 第14-19页 |
| ·海洋来源的生物活性环二肽 | 第19-23页 |
| ·本课题立题背景及研究意义 | 第23页 |
| ·本课题研究内容 | 第23-25页 |
| ·海洋真菌100101A菌株的菌种鉴定及大批量发酵培养 | 第23页 |
| ·海洋真菌100101A次级代谢产物的LC-UV活性筛选方法的建立 | 第23-24页 |
| ·海洋真菌100101A次级代谢产物活性成分分离及结构鉴定 | 第24页 |
| ·单体化合物的活性初步评价 | 第24-25页 |
| 第二章 海洋真菌100101A菌种鉴定及大批量发酵培养 | 第25-35页 |
| ·前言 | 第25页 |
| ·材料和方法 | 第25-29页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第25-27页 |
| ·人工海水的配制及培养基配方 | 第27页 |
| ·常用染色剂的配制 | 第27-28页 |
| ·海洋真菌100101A形态特征观察 | 第28页 |
| ·海洋真菌100101A的菌种鉴定 | 第28页 |
| ·海洋真菌100101A的大批量发酵培养 | 第28页 |
| ·海洋真菌100101A次级代谢产物的粗提 | 第28页 |
| ·海洋真菌100101A次级代谢产物成分初步分析 | 第28-29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-34页 |
| ·海洋真菌100101A形态特征观察 | 第29-30页 |
| ·海洋真菌100101A菌种鉴定结果 | 第30-32页 |
| ·海洋真菌100101A次级代谢产物的成分初步分析结果 | 第32-34页 |
| ·本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 海洋真菌100101A次级代谢产物LC-UV活性筛选方法的建立 | 第35-43页 |
| ·前言 | 第35-36页 |
| ·材料和方法 | 第36-39页 |
| ·实验材料 | 第36-38页 |
| ·实验原理与方法 | 第38页 |
| ·发酵液粗提物HPLC最佳条件的确定 | 第38页 |
| ·HPLC-UV-DPPH联用粗提物自由基清除活性测定 | 第38-39页 |
| ·HPLC-UV-MTT联用粗提物抗肿瘤活性测定 | 第39页 |
| ·结果与讨论 | 第39-42页 |
| ·发酵液粗提物HPLC最佳条件的确定 | 第39-40页 |
| ·HPLC-UV-DPPH联用自由基清除活性测定结果 | 第40页 |
| ·HPLC-UV-MTT联用抗肿瘤活性测定结果 | 第40-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 海洋真菌100101A活性成分的分离及结构鉴定 | 第43-61页 |
| ·前言 | 第43-44页 |
| ·材料和方法 | 第44-45页 |
| ·实验材料 | 第44页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第44页 |
| ·海洋真菌100101A发酵液粗提物活性成分的LC-UV导向分离 | 第44-45页 |
| ·单体化合物的结构鉴定 | 第45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-59页 |
| ·单体化合物分离纯化结果 | 第45-49页 |
| ·单体化合物的结构鉴定 | 第49-57页 |
| ·单体化合物的波谱数据 | 第57-59页 |
| ·本章小结 | 第59-61页 |
| 第五章 单体化合物的活性初步评价 | 第61-67页 |
| ·前言 | 第61页 |
| ·材料和方法 | 第61-63页 |
| ·实验材料 | 第61页 |
| ·单体化合物清除DPPH自由基活性测定 | 第61-62页 |
| ·单体化合物对肿瘤细胞抑制活性测定 | 第62页 |
| ·流式细胞术对单体化合物抗肿瘤活性机制初步探究 | 第62-63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-66页 |
| ·化合物清除DPPH自由基活性评价结果 | 第63-64页 |
| ·化合物抗肿瘤活性评价结果 | 第64-65页 |
| ·化合物1对白血病U937细胞的细胞凋亡的影响 | 第65-66页 |
| ·本章小结 | 第66-67页 |
| 第六章 结论与展望 | 第67-69页 |
| ·结论 | 第67页 |
| ·展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文及专利情况 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-79页 |
