| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 目录 | 第12-14页 |
| 1 绪论 | 第14-16页 |
| 2 BMP信号通路主要分子在胚胎后期及出生后大鼠脊髓神经胶质细胞的表达 | 第16-38页 |
| ·材料和方法 | 第19-21页 |
| ·主要的仪器设备与试剂 | 第19页 |
| ·实验动物 | 第19-20页 |
| ·组织处理 | 第20页 |
| ·免疫组织化学检测 | 第20-21页 |
| ·图像处理 | 第21页 |
| ·实验结果 | 第21-36页 |
| ·BMP受体在不同发育阶段大鼠脊髓神经胶质细胞的表达 | 第21-22页 |
| ·BMP蛋白在不同发育阶段大鼠脊髓神经胶质细胞的表达 | 第22-23页 |
| ·BMP下游活化分子pSmad 1/5/8在不同发育阶段大鼠脊髓神经胶质细胞的表达 | 第23-25页 |
| 附图 | 第25-36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| ·BMP信号转导通路主要相关分子在OLs系的表达变化 | 第36页 |
| ·BMP信号转导通路主要相关分子在AST系的表达变化 | 第36-37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 3 BMP信号干预对胶质细胞发育的影响 | 第38-73页 |
| ·材料和方法 | 第39-47页 |
| ·主要的仪器设备与试剂 | 第39-41页 |
| ·细胞培养及细胞处理 | 第41-43页 |
| ·实验动物 | 第43页 |
| ·实验分组 | 第43-44页 |
| ·免疫组织化学 | 第44页 |
| ·免疫细胞化学 | 第44页 |
| ·Western-Blot | 第44-45页 |
| ·PCR鉴定 | 第45-46页 |
| ·原位杂交检测 | 第46-47页 |
| ·数据收集及处理 | 第47页 |
| ·结果 | 第47-69页 |
| ·BMP信号通路主要相关分子在出生后大鼠脊髓来源的OPCs及其分化形成的OLs上的表达概况 | 第47-48页 |
| ·增加细胞外BMP蛋白浓度对OLs分化及成熟的影响 | 第48-49页 |
| ·细胞内阻断BMP信号对OLs分化及成熟的影响 | 第49-50页 |
| ·细胞内阻断BMP信号对OLs形成髓鞘的影响 | 第50页 |
| ·BMPR IA条件敲除对小鼠脊髓内OPCs的影响 | 第50-51页 |
| ·BMPR IA条件敲除对小鼠脊髓内OLs的影响 | 第51-52页 |
| 附图 | 第52-69页 |
| ·讨论 | 第69-72页 |
| ·细胞外干预BMP浓度对OLs分化及成熟的影响 | 第69页 |
| ·细胞内干预BMP信号对OLs分化及成熟的影响 | 第69-70页 |
| ·细胞内干预BMP信号对OLs形成髓鞘的影响 | 第70页 |
| ·选择性敲除BMPR IA对OLs发育的影响 | 第70-72页 |
| ·小结 | 第72-73页 |
| 4 BMP诱导生成的不同亚型AST对神经元存活及突起生长的影响 | 第73-85页 |
| ·材料和方法 | 第74-77页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第74页 |
| ·细胞培养及细胞处理 | 第74-76页 |
| ·免疫细胞化学 | 第76页 |
| ·Western-blot | 第76页 |
| ·数据收集和处理 | 第76-77页 |
| ·结果 | 第77-82页 |
| ·BMP诱导GRPs生成Type 1A/GDA,OPC生成Type 2A/ODA | 第77页 |
| ·BMP诱导GRPs或OPC生成的GDA或ODA对神经元存活的影响 | 第77页 |
| ·BMP诱导GRPs或OPC生成的GDA或ODA对共神经元突起生长的影响 | 第77-78页 |
| ·BMP诱导GRPs分化形成的GDA表达促神经生长的纤维粘连蛋白(FN) | 第78页 |
| 附图 | 第78-82页 |
| ·讨论 | 第82-84页 |
| ·小结 | 第84-85页 |
| 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 综述 | 第94-106页 |
| 参考文献 | 第99-106页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
