| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 英文缩略词表 | 第13-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-16页 |
| 第二章 碳酸酐酶 1 在 Saos-2 细胞钙化过程中的作用 | 第16-27页 |
| ·材料 | 第17-18页 |
| ·试剂 | 第17页 |
| ·仪器 | 第17-18页 |
| ·研究方法 | 第18-23页 |
| ·Saos-2 细胞的成骨诱导和茜素红检测 | 第18页 |
| ·乙酰唑胺对 Saos-2 细胞钙化的影响 | 第18页 |
| ·MTT 法检测 OM 和 AZ 对 Saos-2 细胞生长的影响 | 第18-19页 |
| ·Real-time PCR 检测成骨分化标志物和 CA1 的表达 | 第19-21页 |
| ·Western Blot 分析 | 第21-23页 |
| ·实验结果 | 第23-26页 |
| ·茜素红染色法检测 Saos-2 细胞的生物矿化程度 | 第23-24页 |
| ·OM 和 AZ 对 Saos-2 细胞生长的影响 | 第24页 |
| ·Real-time PCR 检测 Saos-2 细胞钙化前后骨化标志蛋白 Runx2、ALP、BSP、 OCN、OSX 和 CA1 mRNA 的表达 | 第24-25页 |
| ·Western Blot 分析 Saos-2 细胞钙化前后 CA1 蛋白的表达乙酰唑胺对 Saos-2 细胞钙化的影响 | 第25-26页 |
| ·实验讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 胶原诱导转基因 CA1 高表达小鼠的关节炎发病机制的研究 | 第27-43页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·试剂 | 第28-29页 |
| ·仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-35页 |
| ·CA1 表达载体的构建及转基因小鼠的制备 | 第29页 |
| ·PCR 鉴定 CA1 转基因小鼠的基因型 | 第29-32页 |
| ·Real-time PCR 和 Western Blot 检测 CA1 的表达 | 第32页 |
| ·CIA 模型的制备 | 第32页 |
| ·关节炎指数（arthritis index）和足肿胀度的测定 | 第32页 |
| ·组织病理学检测 | 第32-33页 |
| ·免疫组织化学法检测 CA1 的表达 | 第33-34页 |
| ·X 光片检测 | 第34页 |
| ·ELISA 法分析血清中的 IL-1α、IL-1β、IL-17 和 TNF-α的含量 | 第34-35页 |
| ·统计学处理 | 第35页 |
| ·实验结果 | 第35-41页 |
| ·CA1-Tg 小鼠的构建和 CA1 在转基因小鼠中的表达 | 第35-36页 |
| ·观察关节炎指数、发病率和足垫厚度的统计结果 | 第36-37页 |
| ·HE 染色观察 CIA 小鼠关节组织病理变化 | 第37-38页 |
| ·免疫组织化学法检测 CA1 表达的结果 | 第38-39页 |
| ·X 射线检测 CIA 对不同小鼠骨化程度的影响 | 第39-40页 |
| ·ELISA 检测血清和细胞上清中 IL-1α、IL-1β、IL-17 和 TNF-α含量的变化 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 附录 | 第46页 |
| 文献综述 | 第46-56页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 已发表论文 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
