| 摘要 | 第1-14页 |
| ABSTRACT | 第14-18页 |
| 缩略词表 | 第18-19页 |
| 引言 | 第19-21页 |
| 第一部分 文献综述 | 第21-48页 |
| 第一章 蝴蝶兰、文心兰离体培养及其相关生物技术育种研究进展 | 第21-48页 |
| 1 蝴蝶兰离体培养及其相关生物技术研究进展 | 第21-33页 |
| ·蝴蝶兰离体培养研究主要进展 | 第21-31页 |
| ·外植体选择 | 第22-25页 |
| ·成体植株外植体的选择 | 第22-23页 |
| ·试管苗外植体的选择 | 第23-25页 |
| ·体细胞胚胎发生和类原球茎诱导 | 第25-26页 |
| ·培养基及培养条件 | 第26-30页 |
| ·培养方式与生物反应器研究 | 第30-31页 |
| ·蝴蝶兰组织培养褐化研究进展 | 第31-33页 |
| ·外植体褐变成分、生理因素与褐变的关系 | 第31-32页 |
| ·影响外植体褐变的主要因素 | 第32页 |
| ·褐变控制 | 第32-33页 |
| ·展望 | 第33页 |
| 2 文心兰组织培养及相关生物技术研究进展 | 第33-44页 |
| ·文心兰组培快繁研究主要进展 | 第34-42页 |
| ·类原球茎或丛芽诱导 | 第34-41页 |
| ·外植体 | 第34-35页 |
| ·基本培养基及其添加物 | 第35-38页 |
| ·植物生长调节剂 | 第38-39页 |
| ·培养方式 | 第39-41页 |
| ·其他 | 第41页 |
| ·试管苗增殖、试管苗生根与移栽 | 第41-42页 |
| ·体细胞胚胎发生研究主要进展 | 第42-44页 |
| ·离体叶片体细胞胚胎直接发生 | 第42-43页 |
| ·愈伤组织体细胞胚胎发生 | 第43-44页 |
| 3 蝴蝶兰、文心兰诱变育种研究进展 | 第44-48页 |
| ·观赏植物化学诱变育种的主要特点 | 第44-45页 |
| ·蝴蝶兰、文心兰诱变育种研究进展 | 第45-48页 |
| ·物理诱变 | 第45-46页 |
| ·化学诱变 | 第46-48页 |
| 第二部分 研究报告 | 第48-145页 |
| 第二章 蝴蝶兰离体叶片体细胞胚胎发生及组织学观察 | 第48-57页 |
| 摘要 | 第48页 |
| Abstract | 第48-49页 |
| 1 材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49-50页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·椰子 | 第49页 |
| ·主要试剂 | 第49-50页 |
| ·基本培养基 | 第50页 |
| ·方法 | 第50页 |
| ·椰子汁提取 | 第50页 |
| ·培养基配制 | 第50页 |
| ·外植体处理与接种培养 | 第50页 |
| ·石蜡切片制作及观察 | 第50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-54页 |
| ·植物生长调节剂对叶片胚状体诱导的影响 | 第50-52页 |
| ·6-BA和NAA及其组合的影响 | 第50-51页 |
| ·Ad和NAA其组合的影响 | 第51-52页 |
| ·6-BA、Ad和NAA组合的影响 | 第52页 |
| ·蔗糖浓度及椰汁对叶片胚状体诱导的影响 | 第52-53页 |
| ·胚状体发生发育的组织学观察 | 第53页 |
| ·类原球茎增殖及分化成苗 | 第53-54页 |
| 3 结论与讨论 | 第54-57页 |
| 第三章 蝴蝶兰类原球茎液体增殖培养的研究 | 第57-65页 |
| 摘要 | 第57页 |
| Abstract | 第57-58页 |
| 1 材料和方法 | 第58-59页 |
| ·材料 | 第58-59页 |
| ·试验材料 | 第58页 |
| ·主要试剂 | 第58页 |
| ·椰子汁 | 第58页 |
| ·基本培养基 | 第58-59页 |
| ·方法 | 第59页 |
| ·培养方式及基本培养基 | 第59页 |
| ·接种方法及称重 | 第59页 |
| ·培养条件 | 第59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-63页 |
| ·不同激素浓度对蝴蝶兰PLB增殖及生长状况的影响 | 第59-60页 |
| ·蔗糖对蝴蝶兰PLB增殖和生长的影响 | 第60-61页 |
| ·椰汁浓度对蝴蝶兰PLB增殖和生长的影响 | 第61-62页 |
| ·蝴蝶兰PLB增殖生长曲线及分化苗比较 | 第62-63页 |
| 3 结论与讨论 | 第63-65页 |
| 第四章 蝴蝶兰、文心兰类原球茎薄切片高频诱导PLBS | 第65-74页 |
| 摘要 | 第65页 |
| Abstract | 第65-66页 |
| 1 材料与方法 | 第66-67页 |
| ·材料 | 第66-67页 |
| ·植物材料 | 第66-67页 |
| ·基本培养基 | 第67页 |
| ·主要药品 | 第67页 |
| ·方法 | 第67页 |
| ·类原球茎切片与接种 | 第67页 |
| ·培养条件 | 第67页 |
| ·观察与数据统计 | 第67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-71页 |
| ·植物生长调节剂对两种兰花薄切片形成PLBs的影响 | 第67-70页 |
| ·6-BA和NAA及其组合的影响 | 第67-69页 |
| ·Ad和NAA及其组合的影响 | 第69页 |
| ·6-BA、Ad和NAA组合的影响 | 第69-70页 |
| ·蔗糖浓度及添加椰汁对两种兰花薄切片形成PLBs的影响 | 第70-71页 |
| 3 结论与讨论 | 第71-74页 |
| 第五章 文心兰类原球茎液体增殖培养研究 | 第74-82页 |
| 摘要 | 第74页 |
| Abstract: | 第74-75页 |
| 1 材料和方法 | 第75-76页 |
| ·材料 | 第75-76页 |
| ·试验材料 | 第75页 |
| ·椰子汁 | 第75-76页 |
| ·主要试剂 | 第76页 |
| ·方法 | 第76页 |
| ·培养方式及基本培养基 | 第76页 |
| ·接种方法及称重 | 第76页 |
| ·培养条件 | 第76页 |
| 2 结果与分析 | 第76-80页 |
| ·不同激素浓度配比对文心兰PLB增殖的影响 | 第76-77页 |
| ·蔗糖浓度对文心兰PLB增殖的影响 | 第77-78页 |
| ·椰汁浓度对PLB增殖的影响 | 第78页 |
| ·文心兰PLB增殖生长曲线 | 第78-79页 |
| ·两类培养方式增殖的PLB分化成苗比较 | 第79-80页 |
| 3 结论与讨论 | 第80-82页 |
| 第六章 蝴蝶兰多倍体离体诱导及其鉴定 | 第82-96页 |
| 摘要 | 第82页 |
| Abstract: | 第82-83页 |
| 1 材料与方法 | 第83-85页 |
| ·材料 | 第83-84页 |
| ·外植体 | 第83-84页 |
| ·主要试剂 | 第84页 |
| ·培养基 | 第84页 |
| ·方法 | 第84-85页 |
| ·接种培养 | 第84页 |
| ·类原球茎液体增殖培养 | 第84页 |
| ·试管苗叶片接种培养 | 第84页 |
| ·类原球茎薄切片接种培养 | 第84页 |
| ·秋水仙素处理 | 第84-85页 |
| ·类原球茎液体增殖培养过程中处理 | 第84页 |
| ·叶片体细胞胚胎发生过程中处理 | 第84-85页 |
| ·类原球茎薄切片再生PLBs过程中处理 | 第85页 |
| ·细胞学观察 | 第85页 |
| 2 结果与分析 | 第85-94页 |
| ·类原球茎液体增殖过程中秋水仙素化学诱变 | 第85-89页 |
| ·水仙素对液体增殖培养类原球茎生长、形态特征及分化成苗的影响 | 第85-87页 |
| ·秋水仙素引起原球茎内部细胞结构特征的变化 | 第87-88页 |
| ·不同处理再生试管苗根尖染色体倍性鉴定及诱变率 | 第88-89页 |
| ·蝴蝶兰离体叶片体细胞胚胎发生过程中秋水仙素化学诱变 | 第89-91页 |
| ·秋水仙素处理对叶片类原球茎形成及其成苗的影响 | 第89-90页 |
| ·不同处理再生试管苗根尖染色体倍性鉴定及诱变率 | 第90-91页 |
| ·类原球茎薄切片再生PLBs过程中秋水仙素化学诱变 | 第91-93页 |
| ·秋水仙素处理对类原球茎薄切片生长及苗形成的影响 | 第91-92页 |
| ·不同处理再生试管苗根尖染色体倍性鉴定及诱变率 | 第92-93页 |
| ·多倍体试管苗形态特征及叶片下表皮气孔组织学特征 | 第93-94页 |
| ·蝴蝶兰三种多倍体离体诱导方法比较 | 第94页 |
| 3 结论与讨论 | 第94-96页 |
| 第七章 蝴蝶兰NAN_3、EMS离体化学诱变 | 第96-115页 |
| 摘要 | 第96页 |
| Abstract: | 第96-98页 |
| 1 材料与方法 | 第98-101页 |
| ·材料 | 第98-99页 |
| ·外植体和培养基 | 第98页 |
| ·诱变剂 | 第98页 |
| ·RAPD引物 | 第98-99页 |
| ·PCR反应试剂 | 第99页 |
| ·其他化学试剂 | 第99页 |
| ·方法 | 第99-101页 |
| ·外植体处理和接种培养 | 第99页 |
| ·诱变剂配制 | 第99页 |
| ·诱变处理 | 第99页 |
| ·总DNA提取与电泳检测 | 第99-100页 |
| ·总DNA提取 | 第99-100页 |
| ·电泳检测 | 第100页 |
| ·RAPD反应体系的优化及引物筛选 | 第100页 |
| ·诱变植株基因组RAPD筛选及分析 | 第100-101页 |
| 2 结果与分析 | 第101-112页 |
| ·NaN_3、EMS对类原球茎TCLs生长、PLBs形成和再生苗生长的影响 | 第101-104页 |
| ·NaN_3对类原球茎TCLs生长和再生苗生长的影响 | 第101-102页 |
| ·EMS对类原球茎TCLs生长及再生苗生长的影响 | 第102-104页 |
| ·NaN_3、EMS不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第104-112页 |
| ·蝴蝶兰RAPD反应体系优化及RAPD引物筛选 | 第104-106页 |
| ·NaN_3不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第106-109页 |
| ·3mmol/L NaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第106-107页 |
| ·6mmol/LNaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第107-108页 |
| ·12mmol/LNaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第108-109页 |
| ·EMS不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第109-112页 |
| ·0.2%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第109-110页 |
| ·0.4%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第110-111页 |
| ·0.8%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第111-112页 |
| 3 结论与讨论 | 第112-115页 |
| 第八章 文心兰多倍体离体诱导及其鉴定 | 第115-126页 |
| 摘要 | 第115页 |
| Abstract | 第115-117页 |
| 1 材料与方法 | 第117-118页 |
| ·材料 | 第117页 |
| ·外植体 | 第117页 |
| ·主要试剂 | 第117页 |
| ·培养基 | 第117页 |
| ·方法 | 第117-118页 |
| ·接种培养 | 第117页 |
| ·秋水仙素处理 | 第117-118页 |
| ·类原球茎薄切片再生PLBs过程中处理 | 第117页 |
| ·类原球茎液体增殖培养过程中处理 | 第117-118页 |
| ·细胞学观察 | 第118页 |
| 2 结果与分析 | 第118-124页 |
| ·类原球茎薄切片再生PLBs过程中秋水仙素化学诱变 | 第118-121页 |
| ·秋水仙素处理对薄切片类原球茎及苗形成的影响 | 第118-120页 |
| ·不同处理再生试管苗根尖染色体倍性鉴定及诱变率 | 第120-121页 |
| ·类原球茎液体增殖过程中秋水仙素化学诱变 | 第121-123页 |
| ·秋水仙素对类原球茎形态特征、生长及分化成苗的影响 | 第121-122页 |
| ·不同处理再生试管苗根尖染色体倍性鉴定及诱变率 | 第122-123页 |
| ·突变体试管苗形态特征及叶片下表皮气孔组织学特征 | 第123-124页 |
| ·两种文心兰多倍体离体诱变处理方法比较 | 第124页 |
| 3 结论与讨论 | 第124-126页 |
| 第九章 文心兰NAN_3、EMS离体化学诱变 | 第126-145页 |
| 摘要 | 第126页 |
| Abstract | 第126-128页 |
| 1 材料与方法 | 第128-131页 |
| ·材料 | 第128-129页 |
| ·外植体和培养基 | 第128页 |
| ·诱变剂 | 第128页 |
| ·RAPD引物 | 第128-129页 |
| ·PCR反应试剂 | 第129页 |
| ·其他化学试剂 | 第129页 |
| ·方法 | 第129-131页 |
| ·外植体处理和接种培养 | 第129页 |
| ·诱变剂配制 | 第129页 |
| ·诱变处理 | 第129页 |
| ·总DNA提取与电泳检测 | 第129-130页 |
| ·总DNA提取 | 第129-130页 |
| ·电泳检测 | 第130页 |
| ·RAPD反应体系的优化及引物筛选 | 第130页 |
| ·RAPD反应体系优化 | 第130页 |
| ·引物筛选 | 第130页 |
| ·诱变植株基因RAPD筛选及分析 | 第130-131页 |
| 2 结果与分析 | 第131-143页 |
| ·NaN_3、EMS对类原球茎TCLs生长、PLBs形成和再生苗生长的影响 | 第131-134页 |
| ·NaN_3对类原球茎TCLs生长、PLBs形成和再生苗生长的影响 | 第131-133页 |
| ·EMS对类原球茎TCLs生长、PLBs形成及再生苗生长的影响 | 第133-134页 |
| ·NaN_3、EMS不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第134-143页 |
| ·文心兰RAPD反应体系优化及RAPD引物筛选 | 第134-135页 |
| ·文心兰RAPD反应体系优化 | 第134-135页 |
| ·文心兰RAPD引物筛选 | 第135页 |
| ·NaN_3不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第135-139页 |
| ·3mmol/L NaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第135-137页 |
| ·6mmol/L NaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第137-138页 |
| ·12mmol/L NaN_3不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第138-139页 |
| ·EMS不同处理样品DNA RAPD检测及分析 | 第139-143页 |
| ·0.2%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第139-140页 |
| ·0.4%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第140-141页 |
| ·0.8%EMS不同时间处理植株RAPD检测结果 | 第141-143页 |
| ·形态变异植株DNA RAPD检测 | 第143页 |
| 3 结论与讨论 | 第143-145页 |
| 参考文献 | 第145-157页 |
| 全文结论 | 第157-159页 |
| 本文创新之处 | 第159-161页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第161-163页 |
| 致谢 | 第163页 |
