| 主要中英文缩写词一览表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-12页 |
| 英文摘要 | 第12-19页 |
| 正文 未成熟大鼠实验性PVL模型的建立及AMPA受体亚单位GIuR2和自由基在PVL发病机制中的作用探讨 | 第19-103页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 第一部分 未成熟大鼠PVL动物模型制作及光镜和电镜观察 | 第22-36页 |
| 前言 | 第22-23页 |
| 材料和方法 | 第23-26页 |
| 结果 | 第26-31页 |
| 讨论 | 第31-33页 |
| 结论 | 第33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 第二部分 未成熟大鼠PVL模型的鉴定 | 第36-58页 |
| 前言 | 第36页 |
| 材料和方法 | 第36-41页 |
| 结果 | 第41-52页 |
| 讨论 | 第52-55页 |
| 结论 | 第55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 第三部分 PVL未成熟大鼠脑白质细胞内游离Ca~(2+)含量的检测 | 第58-67页 |
| 前言 | 第58页 |
| 材料和方法 | 第58-60页 |
| 结果 | 第60-62页 |
| 讨论 | 第62-65页 |
| 结论 | 第65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 第四部分 PVL未成熟大鼠脑白质AMPA受体亚单位GluR2在缺氧缺血时的表达 | 第67-91页 |
| 前言 | 第67-69页 |
| 实验1 荧光定量PCR方法检测PVL未成熟大鼠脑白质GluR2mRNA的表达 | 第69-79页 |
| 材料和方法 | 第69-74页 |
| 结果 | 第74-79页 |
| 实验2 Western Blot检测PVL未成熟大鼠脑白质GluR2的表达 | 第79-83页 |
| 材料和方法 | 第79-81页 |
| 结果 | 第81-83页 |
| 讨论 | 第83-87页 |
| 结论 | 第87页 |
| 参考文献 | 第87-91页 |
| 第五部分 PVL未成熟大鼠脑白质SOD、MDA的变化及托吡酯对脑白质的保护作用 | 第91-103页 |
| 前言 | 第91-92页 |
| 实验1 PVL未成熟大鼠脑白质SOD和MDA的变化 | 第92-96页 |
| 材料和方法 | 第92-94页 |
| 结果 | 第94-96页 |
| 实验2 托吡酯对PVL未成熟大鼠脑白质保护作用 | 第96-98页 |
| 材料和方法 | 第96-98页 |
| 结果 | 第98页 |
| 讨论 | 第98-101页 |
| 结论 | 第101页 |
| 参考文献 | 第101-103页 |
| 综述 AMPA受体与缺氧缺血性脑白质损害 | 第103-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
