| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 材料与方法 | 第13-21页 |
| 1、主要试剂和仪器 | 第13-14页 |
| 2、主要试剂配制 | 第14-15页 |
| ·RCR电泳的试剂配制 | 第14-15页 |
| ·免疫组化试剂配制 | 第15页 |
| 3、实验动物模型的建立和标本取材 | 第15-16页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·严重腹腔感染模型制作 | 第15-16页 |
| ·动物分组及标本制备 | 第16页 |
| 4、指标检测及方法 | 第16-20页 |
| ·小肠组织β-cat,Tcf-4 mRNA表达量的测定 | 第16-18页 |
| ·小肠组织β-cat,Tcf-4,LZM免疫组化的测定 | 第18-20页 |
| 5、图象分析 | 第20页 |
| 6、统计学处理 | 第20-21页 |
| 实验结果 | 第21-33页 |
| 1、大鼠严重腹腔感染模型 | 第21-22页 |
| 2、肠黏膜病理改变 | 第22页 |
| 3、严重腹腔感染时肠黏膜β-cat的表达结果 | 第22-25页 |
| ·严重腹腔感染不同时期β-cat蛋白在隐窝中的免疫组化染色 | 第22-25页 |
| ·严重腹腔感染不同时期β-cat基因在隐窝中的表达结果 | 第25页 |
| 4、严重腹腔感染时Tcf-4在小肠隐窝中的表达结果 | 第25-29页 |
| ·严重腹腔感染不同时期Tcf-4蛋白在隐窝中的免疫组化染色 | 第25-28页 |
| ·严重腹腔感染不同时期Tcf-4基因在隐窝中的表达结果 | 第28-29页 |
| 5、严重腹腔感染时LZM在小肠隐窝Paneth细胞中的表达 | 第29-33页 |
| 讨论 | 第33-40页 |
| 1、肠上皮干细胞的特性 | 第33-34页 |
| 2、Wnt/β-catenin通路 | 第34页 |
| 3、严重腹腔感染时β-cat与肠上皮干细胞增殖分化机制的关系 | 第34-37页 |
| 4、严重腹腔感染时Tcf-4在小肠隐窝中的表达变化及意义 | 第37-38页 |
| 5、严重腹腔感染时LZM在小肠隐窝Paneth细胞中表达变化及意义 | 第38-40页 |
| 主要结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 附录 | 第45-70页 |
| 1、综述 | 第45-53页 |
| 2、论著Ⅰ | 第53-63页 |
| 3、论著Ⅱ | 第63-70页 |
| 发表文章及参研课题 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 缩略词表 | 第72-73页 |
