| 提要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 第一部分 电针腰夹脊穴对炎症痛大鼠的镇痛和治疗作用 | 第14-20页 |
| 1 材料 | 第14页 |
| ·动物 | 第14页 |
| ·主要试剂 | 第14页 |
| ·主要仪器 | 第14页 |
| 2 方法 | 第14-15页 |
| ·模型建立 | 第14页 |
| ·动物分组 | 第14-15页 |
| ·痛阈测定 | 第15页 |
| ·足跖容积的测定 | 第15页 |
| ·电针 | 第15页 |
| ·统计学处理方法 | 第15页 |
| 3 结果与分析 | 第15-20页 |
| ·炎症痛动物模型的形成 | 第15-16页 |
| ·大鼠一般情况观察 | 第16页 |
| ·电针夹脊穴对AA 大鼠痛阈的影响 | 第16页 |
| ·电针夹脊穴对AA 大鼠右后足跖容积的变化 | 第16-17页 |
| ·电针夹脊穴AA 大鼠右后足肿胀率的变化 | 第17-20页 |
| 第二部分 SS 对炎症痛大鼠痛阈和针刺镇痛的影响 | 第20-32页 |
| 1 材料 | 第20-21页 |
| ·动物 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| ·主要仪器 | 第21页 |
| 2 方法 | 第21-23页 |
| ·模型建立 | 第21页 |
| ·动物分组 | 第21-22页 |
| ·痛阈测定 | 第22页 |
| ·电针 | 第22页 |
| ·鞘内埋管(INTRATHECAL，IT)与注射 | 第22页 |
| ·侧脑室（INTRACEREBROVENTRICULAR，ICV）埋管与注射 | 第22-23页 |
| ·统计学处理方法 | 第23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-32页 |
| ·鞘内注射SS 和SS 拮抗剂对AA 大鼠痛阈的影响 | 第23页 |
| ·鞘内注射SS 和SS 拮抗剂对AA 大鼠电针镇痛的影响 | 第23-26页 |
| ·纳洛酮、米安色林对鞘内注射SS 的AA 大鼠痛阈的影响 | 第26页 |
| ·侧脑室注射SS 和SS 拮抗剂对AA 大鼠痛阈的影响 | 第26页 |
| ·侧脑室注射SS 和SS 拮抗剂对AA 大鼠电针镇痛的影响 | 第26-32页 |
| 第三部分 SS 对炎症痛大鼠免疫功能和电针作用的影响 | 第32-42页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| ·动物 | 第32页 |
| ·试剂 | 第32页 |
| ·主要仪器 | 第32-33页 |
| 2 方法 | 第33-34页 |
| ·模型建立 | 第33页 |
| ·动物分组 | 第33页 |
| ·电针 | 第33页 |
| ·鞘内埋管(INTRATHECAL，IT)与注射 | 第33页 |
| ·免疫学检测 | 第33-34页 |
| ·统计学处理方法 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-42页 |
| ·电针对三组大鼠血清的IL-2、IL-6、TNF-Α水平的影响 | 第34-35页 |
| ·鞘内注射SS 对AA 大鼠淋巴细胞转化率（LTT）及电针作用的影响 | 第35页 |
| ·鞘内注射SS 对AA 大鼠T 细胞亚群及电针作用的影响 | 第35-36页 |
| ·鞘内注射SS 对AA 大鼠血清IL-2、IL-6、TNF-Α及电针作用的影响 | 第36-42页 |
| 第四部分 SS 及其拮抗剂对炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元诱发电位的影响 | 第42-48页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| ·动物 | 第42页 |
| ·主要试剂 | 第42-43页 |
| ·主要仪器 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-44页 |
| ·模型建立 | 第43页 |
| ·大鼠气管插管和静脉插管术 | 第43页 |
| ·大鼠椎板切除术 | 第43页 |
| ·大鼠生命体征的监护 | 第43页 |
| ·细胞外记录和刺激感受野的测定 | 第43-44页 |
| ·组织学鉴定 | 第44页 |
| ·数据处理 | 第44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-48页 |
| ·炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元对伤害性刺激的反应 | 第44-45页 |
| ·福尔马林注射足部对脊髓背角WDR 神经元诱发放电的影响 | 第45页 |
| ·生理盐水对炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元对伤害性刺激反应的影响 | 第45页 |
| ·SS 对炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元对伤害性刺激反应的影响 | 第45页 |
| ·SS 拮抗剂对炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元对伤害性刺激反应的影响 | 第45-48页 |
| 第五部分 炎症痛时SS 及其受体SSTR2 在脑干和脊髓中的表达及电针的影响 | 第48-56页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| ·动物 | 第48页 |
| ·主要试剂 | 第48-49页 |
| ·主要仪器 | 第49页 |
| 2 方法 | 第49-51页 |
| ·动物分组 | 第49页 |
| ·模型建立与电针 | 第49页 |
| ·大鼠脑组织、脊髓腰膨大的石蜡切片制备 | 第49-50页 |
| ·免疫组织化学技术检测 | 第50-51页 |
| ·观测指标 | 第51页 |
| ·统计学处理 | 第51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-56页 |
| 第六部分 SS 在脊髓与脑啡肽及在NRM 与5-HT 能神经元的共存 | 第56-60页 |
| 1 材料 | 第56-57页 |
| ·动物选择与分组 | 第56页 |
| ·主要试剂 | 第56页 |
| ·主要仪器 | 第56页 |
| ·有关溶液的配制 | 第56-57页 |
| 2 方法 | 第57-58页 |
| ·动物处理及组织切片制备 | 第57页 |
| ·免疫荧光双标组织化学反应 | 第57-58页 |
| ·激光共聚焦荧光显微镜观察及图像的采集 | 第58页 |
| 3 结果与分析 | 第58-60页 |
| ·SS 与脑啡肽免疫阳性神经元的共存 | 第58页 |
| ·SS 与5-HT 免疫阳性神经元的共存 | 第58-60页 |
| 讨论 | 第60-75页 |
| 1 动物模型的选择 | 第60页 |
| 2 夹脊穴镇痛的理论基础 | 第60-65页 |
| ·中医学认识 | 第60-64页 |
| ·现代医学认识 | 第64-65页 |
| 3 电针腰夹脊穴对AA 大鼠的镇痛、治疗作用机制 | 第65-66页 |
| 4 SS 及其拮抗剂对AA 大鼠痛阈和针刺镇痛的作用机制 | 第66-68页 |
| ·SS 和对AA 大鼠电针镇痛的作用机制 | 第66页 |
| ·鞘内注射纳洛酮和米安色林对AA 大鼠痛阈的作用机制 | 第66-68页 |
| 5 SS 和电针对炎症痛大鼠免疫功能的作用机制 | 第68-71页 |
| 6 SS 对炎症痛大鼠脊髓背角广动力（WDR）神经元诱发电位的影响 | 第71-73页 |
| ·模型的选择 | 第71-72页 |
| ·SS 及其拮抗剂对炎症痛大鼠脊髓背角WDR 神经元的作用机制 | 第72-73页 |
| 7 炎症痛时SS 及其受体在脑干和脊髓中的表达及电针的影响 | 第73-74页 |
| 8 炎症痛时SS 在脊髓与脑啡肽及在NRM 与5-HT 能神经元的共存 | 第74-75页 |
| 结语 | 第75-76页 |
| 问题和展望 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-85页 |
| 综述 | 第85-99页 |
| 附录 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101-102页 |
| 科技查新报告 | 第102-112页 |
| 详细摘要 | 第112-120页 |
