| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 谢辞 | 第13-22页 |
| 第一章 绪论 | 第22-45页 |
| ·AD、植物甾醇简介 | 第22-23页 |
| ·AD的分子结构及理化性质 | 第22页 |
| ·植物甾醇结构特点 | 第22-23页 |
| ·AD的应用 | 第23-24页 |
| ·AD的制备途径 | 第24-26页 |
| ·化学合成法 | 第24-25页 |
| ·微生物转化法 | 第25-26页 |
| ·微生物转化植物甾醇制备AD机理 | 第26-29页 |
| ·羟化反应机理 | 第26-27页 |
| ·脱氢反应机理 | 第27-28页 |
| ·甾核的降解 | 第28-29页 |
| ·异构化 | 第29页 |
| ·AD研究现状和研究重点 | 第29-35页 |
| ·AD研究现状 | 第29-30页 |
| ·目前国内外对AD研究重点 | 第30-35页 |
| ·微生物转化法制备AD技术应用前景 | 第35-37页 |
| ·论文的研究目的与意义 | 第37页 |
| ·主要存在的问题 | 第37-38页 |
| ·主要研究内容 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-45页 |
| 第二章 AD转化菌的复合诱变及性能检测 | 第45-59页 |
| ·材料和方法 | 第45-47页 |
| ·菌种 | 第45-46页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第46-47页 |
| ·培养基和培养条件 | 第47页 |
| ·实验方案 | 第47-50页 |
| ·出发菌株的性能测定 | 第47页 |
| ·菌种诱变方案 | 第47页 |
| ·诱变系谱图 | 第47-48页 |
| ·菌种的诱变与筛选方法 | 第48页 |
| ·最优突变株的性能测定 | 第48页 |
| ·分析方法 | 第48-49页 |
| ·检测方法 | 第49-50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-56页 |
| ·AD检测方法的确定 | 第50-53页 |
| ·诱变效果 | 第53-56页 |
| ·稳定性试验 | 第56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第三章 双水相系统中微生物转化植物甾醇制备AD研究 | 第59-67页 |
| ·材料与方法 | 第59-60页 |
| ·菌种 | 第59页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第59-60页 |
| ·培养基和培养条件 | 第60页 |
| ·试验方案 | 第60-61页 |
| ·浓度标准曲线的绘制 | 第60页 |
| ·双水相系统的构建 | 第60页 |
| ·试剂的配制 | 第60-61页 |
| ·结果与讨论 | 第61-64页 |
| ·高聚物与无机盐双水相系统对转化率的影响 | 第61页 |
| ·不同高聚物双水相系统对转化率的影响 | 第61-62页 |
| ·高聚物总浓度对转化率的影响 | 第62页 |
| ·PEG10000与DEX20000百分含量之比对转化率的影响 | 第62-63页 |
| ·缓冲溶液pH和不同缓冲体系对系统转化率的影响 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 第四章 双液相系统中微生物转化植物甾醇制备AD研究 | 第67-75页 |
| ·材料与方法 | 第67-68页 |
| ·菌种 | 第67页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第67-68页 |
| ·培养基和培养条件 | 第68页 |
| ·试验方案 | 第68页 |
| ·有机溶剂的选择 | 第68页 |
| ·底物甾醇添加量对AD转化率的影响 | 第68页 |
| ·添加剂对系统的影响试验 | 第68页 |
| ·正交试验设计 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-73页 |
| ·有机溶剂对AD转化的影响 | 第68-69页 |
| ·底物投料量对AD转化的影响 | 第69-70页 |
| ·添加剂 | 第70-71页 |
| ·正交实验 | 第71-73页 |
| ·本章小结 | 第73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 第五章 Mycobacterium SP-UC-8制备AD的机理研究 | 第75-83页 |
| ·材料与方法 | 第75-76页 |
| ·菌种 | 第75页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第75-76页 |
| ·培养基和培养条件 | 第76页 |
| ·实验方案 | 第76-77页 |
| ·分析方法 | 第76页 |
| ·生物量测定 | 第76-77页 |
| ·实验技术 | 第77页 |
| ·结果与讨论 | 第77-81页 |
| ·酶诱导剂对AD转化的影响 | 第77-78页 |
| ·酶诱导剂对AD转化过程的影响 | 第78-79页 |
| ·酶促进剂对AD转化过程影响 | 第79-80页 |
| ·抑制剂HgCl_2对分枝杆菌发酵液中生物量及多糖的影响 | 第80-81页 |
| ·本章小结 | 第81页 |
| 参考文献 | 第81-83页 |
| 第六章 Mycobacterium SP-UC-8制备AD培养基的优化 | 第83-99页 |
| ·材料与仪器 | 第83-84页 |
| ·菌种 | 第83页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第83-84页 |
| ·培养基和培养条件 | 第84页 |
| ·实验方案 | 第84-85页 |
| ·碳源优化实验 | 第85页 |
| ·氮源优化实验 | 第85页 |
| ·磷酸盐优化实验 | 第85页 |
| ·培养基优化均匀实验设计 | 第85页 |
| ·响应面分析法优化培养基 | 第85页 |
| ·结果与讨论 | 第85-96页 |
| ·碳源对AD转化的影响 | 第85-87页 |
| ·氮源对AD转化的影响 | 第87-88页 |
| ·磷酸盐对AD转化的影响 | 第88-89页 |
| ·响应面分析法培养基优化结果 | 第89-96页 |
| ·本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-99页 |
| 第七章 Mycobacterium SP-UC-8制备AD工艺优化及转化动力学研究 | 第99-112页 |
| ·材料与仪器 | 第99-100页 |
| ·菌种 | 第99页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第99-100页 |
| ·培养基和培养条件 | 第100页 |
| ·试验方案 | 第100-101页 |
| ·菌浓测定 | 第100页 |
| ·总糖的测定 | 第100页 |
| ·培养条件的优化 | 第100-101页 |
| ·数据处理方法 | 第101页 |
| ·转化罐放大试验 | 第101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-110页 |
| ·培养条件对转化结果的影响 | 第101-104页 |
| ·Mycobacterium sp-UV-8的摇瓶分批转化过程 | 第104-105页 |
| ·摇瓶转化动力学模型的建立 | 第105-106页 |
| ·模型的解 | 第106-107页 |
| ·模型的验证 | 第107-108页 |
| ·转化罐放大试验 | 第108-110页 |
| ·本章小结 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-112页 |
| 第八章 AD提取工艺研究 | 第112-123页 |
| ·实验材料与仪器 | 第112-113页 |
| ·菌种 | 第112页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第112-113页 |
| ·实验方案 | 第113-116页 |
| ·萃取剂的选择 | 第113页 |
| ·转化液的浓缩 | 第113页 |
| ·浓缩液的纯化 | 第113页 |
| ·AD提取工艺流程图 | 第113-114页 |
| ·产品品质检测 | 第114-116页 |
| ·结果与分析 | 第116-121页 |
| ·萃取剂的选择 | 第116页 |
| ·NaCl添加量单因素试验结果 | 第116-118页 |
| ·静置时间单因素试验结果 | 第118-119页 |
| ·萃取比单因素实验结果 | 第119页 |
| ·正交实验结果 | 第119-120页 |
| ·AD产品的精制与检测 | 第120-121页 |
| ·本章小结 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-123页 |
| 第九章 结论与展望 | 第123-128页 |
| ·主要结论 | 第123-126页 |
| ·论文创新点 | 第126页 |
| ·研究前景 | 第126-128页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第128页 |
| 专利 | 第128页 |
| 主持项目 | 第128页 |
