| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 插图与附表清单 | 第11-13页 |
| 英文缩写词表 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-35页 |
| ·丙型肝炎与丙型肝炎病毒 | 第15-18页 |
| ·HCV生物学特性与致病机制 | 第15-18页 |
| ·丙型肝炎的诊断和治疗 | 第18页 |
| ·丙型肝炎动物模型 | 第18-22页 |
| ·黑猩猩 | 第19页 |
| ·小鼠 | 第19-21页 |
| ·树鼩作为HCV的小动物模型的研究进展 | 第21-22页 |
| ·丙型肝炎体外培养技术 | 第22-29页 |
| ·HCV亚基因组复制子培养体系 | 第22-24页 |
| ·HCV细胞培养体系 | 第24-25页 |
| ·细胞系 | 第25-27页 |
| ·原代细胞 | 第27-29页 |
| ·丙型肝炎入胞机制与受体 | 第29-34页 |
| ·四个受体及功能机制 | 第29-32页 |
| ·CD81转染增强感染作用及病毒适应性变异 | 第32-34页 |
| ·实验技术路线图 | 第34-35页 |
| 第二章 树鼩原代肝细胞的分离培养方法的优化 | 第35-51页 |
| ·引言 | 第35页 |
| ·材料与方法 | 第35-42页 |
| ·实验动物 | 第35-36页 |
| ·实验试剂 | 第36页 |
| ·实验方法的条件优化 | 第36-42页 |
| ·实验结果 | 第42-47页 |
| ·优化灌流液和离心速度前后树鼩原代肝细胞状态比较 | 第42-43页 |
| ·优化方法前后树鼩原代肝细胞得量、成活率比较 | 第43-44页 |
| ·优化方法后树鼩原代肝细胞生长曲线 | 第44-47页 |
| ·优化方法前后树鼩原代肝细胞存活时间比较 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-50页 |
| ·优化方法对树鼩原代肝细胞的分离获得影响 | 第47-48页 |
| ·优化方法前后树鼩原代肝细胞生长情况的差异 | 第48-49页 |
| ·分析优化方法后树鼩原代肝细胞生长曲线与形态观察 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-51页 |
| 第三章 人CD81受体转染树鼩原代肝细胞 | 第51-65页 |
| ·引言 | 第51-52页 |
| ·材料与方法 | 第52-57页 |
| ·实验材料 | 第52页 |
| ·实验试剂(试剂盒) | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-57页 |
| ·实验结果 | 第57-62页 |
| ·CD81转染后细胞状态,判断转染试剂对细胞的影响 | 第57-58页 |
| ·CD81转染树鼩原代肝细胞PCR检测结果 | 第58-60页 |
| ·CD81转染树鼩原代肝细胞定量PCR检测结果 | 第60-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| ·CD81转染树鼩原代肝细胞定性检测结果分析 | 第62-63页 |
| ·CD81转染树鼩原代肝细胞相对定量结果分析 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-65页 |
| 第四章 受体介导HCV感染树鼩原代肝细胞的感染性的变化与分析 | 第65-74页 |
| ·引言 | 第65-66页 |
| ·材料与方法 | 第66-70页 |
| ·实验材料 | 第66页 |
| ·实验试剂(试剂盒) | 第66页 |
| ·PCR引物 | 第66-67页 |
| ·实验方法 | 第67-70页 |
| ·实验结果 | 第70-72页 |
| ·转染表达了CD81受体的PTH感染HCV后的上清定量PCR结果 | 第70-72页 |
| .4.3.2 比较感染过程中转染的PTH和未转染的上清载量差异。 | 第72页 |
| ·讨论 | 第72-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 第五章 结论 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-85页 |
| 附录A 攻读硕士期间发表论文目录附录 | 第85-86页 |
| 附录B 其他需要说明的内容 | 第86页 |
