| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-13页 |
| 英文摘要 | 第13-16页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 文献回顾 | 第20-41页 |
| 第一部分 激动神经元MT2引起AMPAR内化 | 第41-55页 |
| 实验一 培养皮层神经元 | 第43-46页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
| 2 方法 | 第44-46页 |
| 2.1 神经元原代培养前准备 | 第44-45页 |
| 2.2 皮层神经元培养 | 第45页 |
| 2.3 培养液的更换 | 第45-46页 |
| 实验二 IIK7处理和Western blot检测 | 第46-54页 |
| 1 材料 | 第46-48页 |
| 1.1 实验对象 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂 | 第46-47页 |
| 1.3 主要仪器 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-51页 |
| 2.1 IIK7处理皮层神经元 | 第48-50页 |
| 2.2 Western blot检测 | 第50-51页 |
| 2.3 数据分析 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-54页 |
| 讨论与小结 | 第54-55页 |
| 第二部分 褪黑素对海马CA1区兴奋性突触传递的影响 | 第55-72页 |
| 实验一 褪黑素对体外培养海马神经元EPSC的影响 | 第57-63页 |
| 1 材料 | 第57-58页 |
| 1.1 实验对象 | 第57页 |
| 1.2 主要试剂 | 第57页 |
| 1.3 主要仪器 | 第57-58页 |
| 2 方法 | 第58-60页 |
| 2.1 记录用细胞外液的配制 | 第58页 |
| 2.2 灌流液及实验对象的选择 | 第58页 |
| 2.3 记录用电极內液的制备 | 第58-59页 |
| 2.4 拉制记录电极 | 第59页 |
| 2.5 全细胞膜片钳记录。 | 第59-60页 |
| 2.6 数据分析 | 第60页 |
| 3 结果 | 第60-63页 |
| 3.1 褪黑素对海马神经元sEPSC的影响 | 第60-61页 |
| 3.2 褪黑素对海马神经元mEPSC的影响 | 第61-63页 |
| 实验二 褪黑素对SD大鼠海马CA1区神经元Evoked EPSC的影响 | 第63-68页 |
| 1 材料 | 第63-64页 |
| 1.1 实验动物 | 第63页 |
| 1.2 主要试剂 | 第63-64页 |
| 1.3 主要仪器 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-66页 |
| 2.1 人工脑脊液的制备 | 第64-65页 |
| 2.2 记录用电极內液的制备 | 第65-66页 |
| 2.3 海马CA1区脑片的制备 | 第66页 |
| 2.4 记录电极的拉制 | 第66页 |
| 2.5 Evoked EPSC的记录 | 第66页 |
| 2.6 数据分析 | 第66页 |
| 3 结果 | 第66-68页 |
| 实验三 褪黑素对SD大鼠海马CA1区fEPSP的影响 | 第68-71页 |
| 1 材料 | 第68页 |
| 1.1 实验动物 | 第68页 |
| 1.2 主要试剂 | 第68页 |
| 1.3 主要仪器 | 第68页 |
| 2 方法 | 第68-69页 |
| 2.1 在体记录前的准备 | 第68-69页 |
| 2.2 在体电生理记录 | 第69页 |
| 2.3 数据分析 | 第69页 |
| 3 结果 | 第69-71页 |
| 讨论与小结 | 第71-72页 |
| 第三部分 褪黑素诱导LTD的机制探索 | 第72-85页 |
| 实验一 NMDAR与I型mGLuR受体拮抗剂对褪黑素引起LTD的影响 | 第73-76页 |
| 1 材料 | 第73页 |
| 1.1 实验动物 | 第73页 |
| 1.2 主要试剂 | 第73页 |
| 1.3 主要仪器 | 第73页 |
| 2 方法 | 第73-74页 |
| 2.1 人工脑脊液的制备 | 第73页 |
| 2.2 记录用电极內液的制备 | 第73页 |
| 2.3 记录电极的拉制 | 第73页 |
| 2.4 Evoked EPSC的记录 | 第73-74页 |
| 2.5 数据分析 | 第74页 |
| 3 结果 | 第74-76页 |
| 3.1 DL-APV对褪黑素在海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第74-75页 |
| 3.2 DL-AP3对褪黑素在海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第75-76页 |
| 实验二 不同电刺激诱导LTD与褪黑素引起LTD的关系 | 第76-80页 |
| 1 材料 | 第76页 |
| 1.1 实验动物 | 第76页 |
| 1.2 主要试剂 | 第76页 |
| 1.3 主要仪器 | 第76页 |
| 2 方法 | 第76-77页 |
| 2.1 人工脑脊液的制备 | 第76页 |
| 2.2 记录用电极內液的制备 | 第76页 |
| 2.3 记录电极的拉制 | 第76页 |
| 2.4 Evoked EPSC的记录 | 第76-77页 |
| 2.5 数据分析 | 第77页 |
| 3 结果 | 第77-80页 |
| 3.1 LFS对褪黑素在海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第77-78页 |
| 3.2 pp LFS对褪黑素在海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第78-80页 |
| 实验三 不同受体拮抗剂对褪黑素在SD大鼠海马CA1区产生LTD的影响 | 第80-83页 |
| 1 材料 | 第80页 |
| 1.1 实验动物 | 第80页 |
| 1.2 主要试剂 | 第80页 |
| 1.3 主要仪器 | 第80页 |
| 2 方法 | 第80-81页 |
| 2.1 在体记录前的准备 | 第80页 |
| 2.2 在体电生理记录 | 第80页 |
| 2.3 数据分析 | 第80-81页 |
| 3 结果 | 第81-83页 |
| 3.1 4-P-PDOT对褪黑素在麻醉的SD大鼠海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第81页 |
| 3.2 DL-AP3对褪黑素在麻醉的SD大鼠海马CA1区诱导的LTD的影响 | 第81-83页 |
| 讨论与小结 | 第83-85页 |
| 第四部分 MT2在FXS中的作用探索 | 第85-94页 |
| 实验一 Fmr1 KO小鼠脑内褪黑素受体水平 | 第86-89页 |
| 1 材料 | 第86-87页 |
| 1.1 实验动物 | 第86页 |
| 1.2 主要试剂 | 第86页 |
| 1.3 主要仪器 | 第86-87页 |
| 2 方法 | 第87页 |
| 2.1 样品的准备 | 第87页 |
| 2.2 Western blot检测 | 第87页 |
| 2.3 数据分析 | 第87页 |
| 3 结果 | 第87-89页 |
| 实验二 下调ACC区MT2对Fmr1 KO小鼠恐惧记忆能力的影响 | 第89-93页 |
| 1 材料 | 第89页 |
| 1.1 实验动物 | 第89页 |
| 1.2 主要试剂 | 第89页 |
| 1.3 主要仪器 | 第89页 |
| 2 方法 | 第89-91页 |
| 2.1 MT2 shRNA慢病毒载体的获得 | 第89页 |
| 2.2 实验动物分组处理 | 第89-90页 |
| 2.3 皮层ACC区脑立体定位手术 | 第90页 |
| 2.4 慢病毒感染效率检测 | 第90页 |
| 2.5 行为学检测 | 第90-91页 |
| 2.6 数据分析 | 第91页 |
| 3 结果 | 第91-93页 |
| 讨论与小结 | 第93-94页 |
| 结论 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-108页 |
| 个人简历与研究成果 | 第108-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
