| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 第一章 Ghrelin对MPP~+处理的MES23.5细胞的保护作用及其可能机制的探讨 | 第11-37页 |
| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 材料和方法 | 第15-25页 |
| 1. 药物处理 | 第15页 |
| 2. 细胞培养和细胞接种 | 第15-16页 |
| 3. 细胞MDA含量测定 | 第16-18页 |
| 4. RT-PCR检测目的基因的表达 | 第18-21页 |
| 5. Western-blots检测目的基因的表达 | 第21-24页 |
| 6. 统计学处理 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-31页 |
| 1. Ghrelin减轻MPP~+引起的脂质过氧化程度 | 第25页 |
| 2. Ghrelin抑制MPP~+诱导的CAT表达的下调 | 第25-27页 |
| 3. Ghrelin抑制MPP~+诱导的Cu/Zn-SOD蛋白表达的下调 | 第27页 |
| 4. Ghrelin拮抗MPP~+诱导的Bax/Bcl-2比值的升高 | 第27-28页 |
| 5. Ghrelin抑制MPP~+诱导的caspase-3蛋白表达的上调 | 第28-29页 |
| 6. Ghrelin促进Nrf2蛋白的表达 | 第29-30页 |
| 7. Ghrelin抑制MPP~+引起的NF-κB的核移位 | 第30-31页 |
| 讨论 | 第31-37页 |
| 第二章 高表达GHS-R1a对MPTP诱导的PD模型小鼠多巴胺能神经元的保护作用 | 第37-73页 |
| 摘要 | 第37-38页 |
| Abstract | 第38-39页 |
| 前言 | 第39-40页 |
| 材料和方法 | 第40-59页 |
| 1. GHS-R1a目的基因的制备 | 第40-42页 |
| 2. 携带GHS-R1a基因的腺病毒载体的构建 | 第42-47页 |
| 3. 重组腺病毒的包装 | 第47-49页 |
| 4. GHS-R1a mRNA 在HEK293细胞表达的检测 | 第49-51页 |
| 5. GHS-R1a蛋白在HEK293细胞表达的检测 | 第51页 |
| 6. 病毒滴度的测定和纯化 | 第51-52页 |
| 7. 病毒定点注射 | 第52-53页 |
| 8. 小鼠黑质GHS-R1a蛋白的表达 | 第53页 |
| 9. Str内DA及其代谢产物含量的测定(HPLC法) | 第53-55页 |
| 10. 免疫组织化学测定 | 第55-56页 |
| 11. 小鼠黑质TH mRNA表达的变化 | 第56-58页 |
| 12. 统计学处理 | 第58-59页 |
| 结果 | 第59-68页 |
| 1. 携带GHS-R1a基因的重组腺病毒载体的构建 | 第59-61页 |
| 2. 重组腺病毒的包装 | 第61-62页 |
| 3. 重组腺病毒的滴度 | 第62页 |
| 4. GHS-R1a mRNA在293细胞中的表达 | 第62-63页 |
| 5. GHS-R1a蛋白在293细胞中的表达 | 第63页 |
| 6. GHS-R1a蛋白在小鼠黑质中的表达 | 第63-64页 |
| 7. 黑质GHS-R1a高表达对MPTP小鼠Str内DA及其代谢产物含量的影响 | 第64-65页 |
| 8. 黑质GHS-R1a高表达降低MPTP小鼠Str内DA代谢率 | 第65-66页 |
| 9. 黑质GHS-R1a高表达增加MPTP小鼠SNpc TH免疫阳性细胞的数目 | 第66-67页 |
| 10. 黑质GHS-R1a高表达抑制MPTP小鼠SN TH mRNA表达的下调 | 第67-68页 |
| 讨论 | 第68-73页 |
| 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 综述 | 第82-106页 |
| 参考文献 | 第98-106页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第106-107页 |
| 附录 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109-111页 |
