| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-15页 |
| 目录 | 第15-18页 |
| 1 引言 | 第18-38页 |
| ·光合作用的调控 | 第18-23页 |
| ·CO_2的吸收和利用 | 第18-19页 |
| ·光能的吸收和利用 | 第19-20页 |
| ·磷酸丙糖利用及淀粉的反馈调节 | 第20-22页 |
| ·Rubisco活化酶对Rubisco的调节 | 第22-23页 |
| ·油菜素内酯的信号转导及作用 | 第23-27页 |
| ·BRs对植物环境适应性的调控 | 第24-26页 |
| ·BRs信号转导的工作模型 | 第26-27页 |
| ·ROS的信号转导作用 | 第27-32页 |
| ·ROS的信号转导途径 | 第28-29页 |
| ·ROS在植物抗逆性中的作用 | 第29-31页 |
| ·H_2O_2在抗性中的作用 | 第31-32页 |
| ·Redox介导的信号途径 | 第32-36页 |
| ·Redox的信号转导途径 | 第33-35页 |
| ·GSH在植物体内的生理作用 | 第35-36页 |
| ·本文的研究目的和意义 | 第36-38页 |
| 2 EBR、H_2O_2对光合参数、Rubisco酶的影响 | 第38-52页 |
| ·材料与方法 | 第39-43页 |
| ·材料培养和实验设计 | 第39-40页 |
| ·光合气体交换与叶绿素荧光测定 | 第40-41页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第41页 |
| ·叶绿素、可溶性蛋白含量的测定 | 第41页 |
| ·碳水化合物含量及其代谢酶活性的测定 | 第41-42页 |
| ·Rubisco活性的测定 | 第42-43页 |
| ·结果与分析 | 第43-47页 |
| ·EBR、H_2O_2对气体交换和叶绿素荧光参数的影响 | 第43-44页 |
| ·EBR、H_2O_2对生物量、叶面积、叶绿素含量及可溶性蛋白含量的影响 | 第44-45页 |
| ·EBR、H_2O_2对光呼吸和碳水化合物代谢的影响 | 第45-47页 |
| ·EBR、H_2O_2对Rubisco活性及含量的影响 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-52页 |
| 3 H_2O_2在BRs调控碳水化合物代谢中的作用 | 第52-61页 |
| ·材料与方法 | 第53-55页 |
| ·植物材料与处理 | 第53-54页 |
| ·光合气体交换参数的测定 | 第54页 |
| ·碳水化合物含量及其代谢酶活性的测定 | 第54页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成及RT-PCR分析 | 第54-55页 |
| ·结果与分析 | 第55-57页 |
| ·H_2O_2参与BRs对气体交换参数的调控 | 第55页 |
| ·H_2O_2在EBR调控碳水化合物代谢过程中的作用 | 第55-56页 |
| ·H_2O_2参与的BRs对碳水化合物代谢相关基因表达的调控 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-61页 |
| 4 H_2O_2信号介导EBR对黄瓜光合作用的调控 | 第61-74页 |
| ·材料与方法 | 第62-66页 |
| ·植物材料与处理 | 第62-63页 |
| ·光合气体交换参数的测定 | 第63页 |
| ·H_2O_2组织化学染色 | 第63页 |
| ·H_2O_2亚细胞染色 | 第63页 |
| ·Rubisco活化酶的测定 | 第63-64页 |
| ·FBPase活性的测定 | 第64页 |
| ·Western印迹分析 | 第64页 |
| ·Rubisco活化酶免疫金标记 | 第64-65页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成 | 第65-66页 |
| ·结果与分析 | 第66-72页 |
| ·BRs对H_2O_2含量的影响 | 第66-69页 |
| ·H_2O_2参与BRs对气体交换参数及卡尔文相关基因表达的调控 | 第69-70页 |
| ·H_2O_2参与的BRs对RCA和FBPase基因表达及活性的调控 | 第70页 |
| ·H_2O_2参与的BRs对RCA蛋白及免疫金定位的调控 | 第70-72页 |
| ·讨论 | 第72-74页 |
| 5 氧化还原信号对BRs提高黄瓜光合作用的调节 | 第74-89页 |
| ·材料与方法 | 第75-77页 |
| ·植物材料与处理 | 第75-76页 |
| ·光合气体交换参数的测定 | 第76页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第76页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第76页 |
| ·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第76页 |
| ·AsA-GSH循环中关键酶的测定 | 第76-77页 |
| ·RCA和FBPase活性的测定 | 第77页 |
| ·荧光实时定量PCR(RT-PCR)分析 | 第77页 |
| ·结果与分析 | 第77-82页 |
| ·谷胱甘肽氧化还原状态对EBR浓度梯度的响应 | 第77-79页 |
| ·A_(sat)、H_2O_2含量及谷胱甘肽氧化还原状态对EBR的时间响应 | 第79页 |
| ·A_(sat)、谷胱甘肽氧化还原状态对H_2O_2浓度梯度的响应 | 第79页 |
| ·谷胱甘肽氧化还原状态参与BRs对光合作用的调控 | 第79-82页 |
| ·讨论 | 第82-89页 |
| 6 依赖于BRs水平的谷胱甘肽氧化还原状态对Rubisco活化酶的影响 | 第89-102页 |
| ·材料与方法 | 第90-92页 |
| ·植物材料与处理 | 第90-91页 |
| ·光合气体交换参数的测定 | 第91页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第91页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第91页 |
| ·AsA-GSH循环中关键酶的测定 | 第91页 |
| ·RCA活性的测定 | 第91页 |
| ·荧光实时定量PCR(RT-PCR)分析 | 第91页 |
| ·RCA的提取及纯化 | 第91-92页 |
| ·叶绿体的分离 | 第92页 |
| ·结果与分析 | 第92-98页 |
| ·BRs水平对气体交换参数、H_2O_2含量及谷胱甘肽水平的影响 | 第92-94页 |
| ·BRs水平对叶绿体内谷胱甘肽水平及相关酶活的影响 | 第94-95页 |
| ·BRs水平对叶绿体基因表达的影响 | 第95-96页 |
| ·谷胱甘肽氧化还原状态对纯化的RCA的影响 | 第96-98页 |
| ·讨论 | 第98-102页 |
| 7 加富CO_2条件下EBR对黄瓜光合作用的影响 | 第102-113页 |
| ·材料与方法 | 第103-104页 |
| ·材料培养和实验设计 | 第103页 |
| ·光合气体交换与叶绿素荧光测定 | 第103页 |
| ·总叶绿素和可溶性蛋白含量的测定 | 第103页 |
| ·碳水化合物含量的测定 | 第103-104页 |
| ·总DNA提取及cDNA合成及RT-PCR分析 | 第104页 |
| ·RCA及FBPase活性的测定 | 第104页 |
| ·PGK及PRK活性的测定 | 第104页 |
| ·结果与分析 | 第104-111页 |
| ·加富CO_2条件下EBR对气体交换和叶绿素荧光参数的影响 | 第104-107页 |
| ·EBR在正常和加富CO_2条件下对生物量、叶面积、叶绿素含量及可溶性蛋白含量的影响 | 第107-108页 |
| ·EBR在正常和加富CO_2条件下对碳水化合物代谢的影响 | 第108页 |
| ·EBR在正常和加富CO_2条件下对卡尔文循环关键基因表达的影响 | 第108-110页 |
| ·EBR在正常和加富CO_2条件下对卡尔文循环关键酶活性的影响 | 第110-111页 |
| ·讨论 | 第111-113页 |
| 8 结论 | 第113-116页 |
| 1. EBR、H_2O_2对光合参数、Rubisco酶的影响 | 第113页 |
| 2. H_2O_2信号介导EBR对作物光合作用的调控 | 第113-114页 |
| 3. 氧化还原信号介导的对BRs提高光合作用的调节 | 第114页 |
| 4. 依赖于BRs水平的谷胱甘肽氧化还原状态对Rubisco活化酶的影响 | 第114页 |
| 5. EBR在正常和加富CO_2条件下对光合作用的影响 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-138页 |
| 作者简历 | 第138页 |
