| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略词表 | 第11-15页 |
| 绪论 | 第15-26页 |
| 种子细胞 | 第15-18页 |
| 细胞外基质 | 第18-20页 |
| 支架材料 | 第20-26页 |
| 第一部分 ASCs与BMSCs的分离鉴定及成骨能力的比较 | 第26-47页 |
| 1 实验相关设备试剂及材料 | 第26-28页 |
| 1.1 实验中涉及的设备,器具及耗材 | 第26页 |
| 1.2 实验中涉及的相关试剂溶液 | 第26-27页 |
| 1.3 实验材料 | 第27-28页 |
| 2 实验方法 | 第28-37页 |
| 2.1 ASCs及BMSCs的分离及培养: | 第28-29页 |
| 2.2 细胞计数 | 第29-30页 |
| 2.3 免疫荧光检测 | 第30页 |
| 2.4 成骨诱导分化及染色 | 第30-31页 |
| 2.5 成脂诱导分化及染色 | 第31-32页 |
| 2.6 成软骨诱导分化及染色 | 第32-33页 |
| 2.7 单细胞克隆形成(CFU-F)实验 | 第33-34页 |
| 2.8 细胞活力检测 | 第34页 |
| 2.9 不同地塞米松浓度对成骨效能影响的实验 | 第34-36页 |
| 2.10 不同诱导时间对成骨影响的实验 | 第36-37页 |
| 3 实验结果 | 第37-43页 |
| 3.1 ASCs及BMSCs的分离提取及培养: | 第37-38页 |
| 3.2 免疫荧光检测 | 第38-39页 |
| 3.3 成脂、成骨、成软骨诱导分化及染色 | 第39-40页 |
| 3.4 单细胞克隆形成(CFU-F)实验 | 第40-41页 |
| 3.5 细胞活力检测 | 第41-42页 |
| 3.6 不同地塞米松浓度对成骨效能影响的实验 | 第42-43页 |
| 3.7 不同诱导时间对成骨影响的实验 | 第43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 5 本部分小结 | 第46-47页 |
| 第二部分 ASCs与BMSCs及BM-ECM共培养对成骨影响的实验研究 | 第47-67页 |
| 1 实验相关设备试剂及材料 | 第47-48页 |
| 1.1 实验中涉及的设备,器具及耗材 | 第47-48页 |
| 1.2 实验中涉及的相关试剂溶液 | 第48页 |
| 1.3 实验材料 | 第48页 |
| 2 实验方法 | 第48-56页 |
| 2.1 CCK8增殖实验 | 第49-50页 |
| 2.2 不同比例ASCs与BMSCs共培养茜素红定性及半定量染色 | 第50-51页 |
| 2.3 不同比例ASCs与BMSCs共培养相关基因Q-PCR检测 | 第51-54页 |
| 2.4 ASCs与BMSCs-ECM共培养茜素红染色 | 第54-56页 |
| 2.5 数据分析 | 第56页 |
| 3 实验结果 | 第56-62页 |
| 3.1 CCK8增殖实验 | 第56-57页 |
| 3.2 不同比例ASCs与BMSCs共培养茜素红定性及半定量染色 | 第57页 |
| 3.3 不同比例ASCs与BMSCs共培养相关基因Q-PCR检测 | 第57-60页 |
| 3.4 ASCs与BMSCs-ECM共培养茜素红染色 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-66页 |
| 5 本部分小结 | 第66-67页 |
| 第三部分 BMSCs与天然合成物3D水凝胶共培养体外实验 | 第67-85页 |
| 1 实验相关设备试剂及材料 | 第67-68页 |
| 1.1 实验中涉及的设备,器具及耗材 | 第67页 |
| 1.2 实验中涉及的相关试剂溶液 | 第67-68页 |
| 1.3 实验材料 | 第68页 |
| 2 实验方法 | 第68-75页 |
| 2.1 三种3D水凝胶制备 | 第68-70页 |
| 2.2 红外光谱分析 | 第70-71页 |
| 2.3 扫描电镜 | 第71-72页 |
| 2.4 压力测试 | 第72页 |
| 2.5 体外浸泡实验 | 第72页 |
| 2.6 细胞活力检测 | 第72-73页 |
| 2.7 成骨分化检测 | 第73-74页 |
| 2.8 数据分析 | 第74-75页 |
| 3 实验结果 | 第75-82页 |
| 3.1 三种3D水凝胶制备 | 第75-77页 |
| 3.2 红外光谱分析 | 第77-78页 |
| 3.3 扫描电镜 | 第78-79页 |
| 3.4 压力测试 | 第79-80页 |
| 3.5 体外浸泡实验 | 第80页 |
| 3.6 细胞活力检测 | 第80-81页 |
| 3.7 成骨分化检测 | 第81-82页 |
| 4 讨论 | 第82-83页 |
| 5 本部分小结 | 第83-85页 |
| 第四部分 BMSCs与天然合成物3D水凝胶共培养体内实验 | 第85-102页 |
| 1 实验相关设备试剂及材料 | 第85-87页 |
| 1.1 实验中涉及的设备,器具及耗材 | 第85-86页 |
| 1.2 实验中涉及的相关试剂溶液 | 第86-87页 |
| 1.3 实验材料 | 第87页 |
| 2 实验方法 | 第87-94页 |
| 2.1 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验 | 第87-88页 |
| 2.2 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验Micro CT | 第88-89页 |
| 2.3 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验组织学染色 | 第89-91页 |
| 2.4 三种3D水凝胶材料体内原位成骨动物实验 | 第91-93页 |
| 2.5 三种3D水凝胶材料体内原位成骨动物实验Micro CT | 第93页 |
| 2.6 三种3D水凝胶材料体内原位成骨动物实验组织学染色 | 第93页 |
| 2.7 数据分析 | 第93-94页 |
| 3 实验结果 | 第94-100页 |
| 3.1 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验 | 第94-95页 |
| 3.2 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验Micro CT | 第95页 |
| 3.3 三种3D水凝胶材料体内异位成骨动物实验组织学染色 | 第95-98页 |
| 3.4 三种3D水凝胶材料体内原位成骨动物实验Micro CT | 第98-99页 |
| 3.5 三种3D水凝胶材料体内原位成骨动物实验组织学染色 | 第99-100页 |
| 4 讨论 | 第100-101页 |
| 5 本部分小结 | 第101-102页 |
| 全文总结 | 第102-106页 |
| 参考文献 | 第106-116页 |
| 致谢 | 第116-118页 |
| 攻读学位期间发表论文及申请专利 | 第118-120页 |
