| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第1章 绪论 | 第15-49页 |
| 1.1 悬浮微球生物检测技术 | 第15-16页 |
| 1.2 悬浮微球生物检测技术的原理 | 第16-19页 |
| 1.3 微球检测信号的选择与激光诱导荧光发光 | 第19-20页 |
| 1.4 单个微球信号的常见检测方法 | 第20-24页 |
| 1.4.1 基于流体聚焦的悬浮微球检测 | 第20-22页 |
| 1.4.2 磁场辅助的悬浮微球检测 | 第22-23页 |
| 1.4.3 声场辅助的悬浮微球检测 | 第23-24页 |
| 1.5 光镊技术简介 | 第24-26页 |
| 1.6 光镊技术的发展 | 第26-33页 |
| 1.6.1 贝塞尔光束光镊 | 第27-28页 |
| 1.6.2 空心光束光镊 | 第28-29页 |
| 1.6.3 时分复用光镊 | 第29-30页 |
| 1.6.4 全息光镊 | 第30-32页 |
| 1.6.5 拉曼光镊 | 第32-33页 |
| 1.7 光镊的典型应用 | 第33-38页 |
| 1.7.1 光镊在细胞生物学中的应用 | 第33-34页 |
| 1.7.2 光镊在生物物理学中的应用 | 第34-35页 |
| 1.7.3 光镊在分析化学中的应用 | 第35-38页 |
| 1.8 本论文的立题思想和主要工作 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-49页 |
| 第2章 光镊捕获原理与光镊装置的构建 | 第49-77页 |
| 2.1 引言 | 第49页 |
| 2.2 光镊的基本原理 | 第49-56页 |
| 2.2.1 光与物质作用的微观散射原理与光镊受力模型概述 | 第49-52页 |
| 2.2.2 严格的电磁散射模型 | 第52页 |
| 2.2.3 Rayleigh近似电磁模型 | 第52-54页 |
| 2.2.4 GO模型 | 第54-56页 |
| 2.2.5 光镊受力模型总结 | 第56页 |
| 2.3 光镊装置的构建 | 第56-66页 |
| 2.3.1 光镊装置关键部件的选择 | 第57-61页 |
| 2.3.1.1 显微镜平台 | 第57-58页 |
| 2.3.1.2 光镊激光 | 第58-59页 |
| 2.3.1.3 用于激光会聚与荧光成像的物镜 | 第59-60页 |
| 2.3.1.4 隔振平台 | 第60页 |
| 2.3.1.5 照明系统 | 第60-61页 |
| 2.3.1.6 信号检测系统 | 第61页 |
| 2.3.2 蓝光单光镊装置的构建 | 第61-63页 |
| 2.3.3 近红外阵列光阱的构建 | 第63-66页 |
| 2.4 光镊捕获阱位的调节 | 第66-70页 |
| 2.4.1 473 nm单光阱光镊的阱位调节 | 第67-68页 |
| 2.4.2 980 nm多光阱光镊的阱位调节 | 第68-70页 |
| 2.5 光镊对不同尺寸微粒的捕获 | 第70-71页 |
| 2.6 光阱刚度的测定 | 第71-74页 |
| 2.6.1 实验设计 | 第71-73页 |
| 2.6.2 光阱刚度的测定结果 | 第73-74页 |
| 2.7 本章小结 | 第74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 第3章 光镊捕获同步荧光激发悬浮微球检测H7N9禽流感病毒基因 | 第77-96页 |
| 3.1 引言 | 第77-78页 |
| 3.2 实验装置 | 第78-80页 |
| 3.2.1 装置的构成 | 第79页 |
| 3.2.2 装置构建 | 第79-80页 |
| 3.3 实验部分 | 第80-85页 |
| 3.3.1 微球DNA杂交的实验试剂与仪器 | 第80-81页 |
| 3.3.2 捕获微球的制备 | 第81-82页 |
| 3.3.3 DNA的一步杂交反应与量子点标记 | 第82-83页 |
| 3.3.4 悬浮微球的光镊捕获、同步荧光激发和检测 | 第83页 |
| 3.3.5 标准曲线 | 第83-84页 |
| 3.3.6 检测信号的稳定性考察 | 第84页 |
| 3.3.7 检测方法的选择性与特异性考察 | 第84-85页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第85-92页 |
| 3.4.1 光镊激光功率的调节与捕获行为 | 第85-86页 |
| 3.4.2 DNA一步法杂交检测原理 | 第86-87页 |
| 3.4.3 微球杂交反应条件的优化 | 第87-90页 |
| 3.4.3.1 一步法杂交反应条件的反应温度与时间的优化 | 第87-88页 |
| 3.4.3.2 微球表面核酸链密度的优化 | 第88-89页 |
| 3.4.3.3 微球用量的优化 | 第89-90页 |
| 3.4.4 双组份靶DNA检测的标准曲线 | 第90-91页 |
| 3.4.5 方法的选择性与特异性 | 第91-92页 |
| 3.5 结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-96页 |
| 第4章 基于衍射光学构建的阵列光镊在前列腺癌标志物检测中的应用 | 第96-121页 |
| 4.1 引言 | 第96页 |
| 4.2 前列腺特异性抗原(PSA)及其检测的意义 | 第96-99页 |
| 4.3 衍射光学元件 | 第99-101页 |
| 4.4 荧光阵列光镊装置的搭建 | 第101-106页 |
| 4.4.1 装置器件 | 第102页 |
| 4.4.2 装置构建 | 第102-103页 |
| 4.4.3 基于DOE构建的阵列光阱的特点 | 第103-104页 |
| 4.4.4 DOE产生的阵列光阱的捕获行为 | 第104-105页 |
| 4.4.5 980 nm阵列光阱中荧光微球的激发 | 第105-106页 |
| 4.5 悬浮微球免疫反应实验 | 第106-110页 |
| 4.5.1 实验药品与试剂 | 第106-107页 |
| 4.5.2 免疫捕获微球的制备 | 第107-108页 |
| 4.5.3 免疫微球的检测反应 | 第108-109页 |
| 4.5.4 利用阵列光镊装置捕获检测微球信号 | 第109页 |
| 4.5.5 悬浮微球检测双指标PSA标准曲线的测定 | 第109页 |
| 4.5.6 免疫微球检测的特异性与选择性考察 | 第109-110页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第110-118页 |
| 4.6.1 悬浮免疫微球检测多组分PSA原理 | 第110-111页 |
| 4.6.2 悬浮微球免疫反应条件的优化 | 第111-113页 |
| 4.6.2.1 捕获微球制备抗体加样量的优化 | 第111-112页 |
| 4.6.2.2 反应温度与时间的优化 | 第112页 |
| 4.6.2.3 微球用量的优化 | 第112-113页 |
| 4.6.3 悬浮微球检测PSA的标准曲线的测定 | 第113-114页 |
| 4.6.4 悬浮微球检测法的在复杂样品中的标准曲线的测定 | 第114-115页 |
| 4.6.5 悬浮微球检测法的在复杂样品中的选择性与特异性 | 第115-117页 |
| 4.6.6 实际样品的检测 | 第117-118页 |
| 4.7 本章小结 | 第118页 |
| 参考文献 | 第118-121页 |
| 第5章 总结与展望 | 第121-123页 |
| 5.1 总结 | 第121-122页 |
| 5.2 展望 | 第122-123页 |
| 附录: 攻读博士学位期间已发表及待发表的科研成果 | 第123-125页 |
| 致谢 | 第125-126页 |
