摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第一章 文献综述 | 第9-23页 |
1.1 选题背景 | 第9-21页 |
1.1.1 唾液酸简介 | 第9-10页 |
1.1.2 唾液酸在自然界中的分布 | 第10-11页 |
1.1.3 鸡蛋中的唾液酸 | 第11-12页 |
1.1.4 唾液酸的理化性质 | 第12-13页 |
1.1.5 唾液酸的生产方法 | 第13-15页 |
1.1.6 叠氮化钠对酶的影响 | 第15页 |
1.1.7 唾液酸的测定方法 | 第15-16页 |
1.1.8 唾液酸的生物作用与功能 | 第16-19页 |
1.1.9 唾液酸在医学上的应用 | 第19-21页 |
1.2 研究内容与前景展望 | 第21-23页 |
第二章 材料和方法 | 第23-30页 |
2.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.1 菌种 | 第23页 |
2.1.2 培养基 | 第23页 |
2.1.3 酶作用底物的预处理 | 第23页 |
2.2 实验方法 | 第23-30页 |
2.2.1 菌种的培养 | 第24页 |
2.2.2 化学分析方法 | 第24-27页 |
2.2.3 酶活力的测定方法 | 第27-28页 |
2.2.4 粗酶的酶学性质的测定 | 第28-30页 |
第三章 结果与讨论 | 第30-48页 |
3.1 测酶活方法的确定 | 第30-32页 |
3.1.1 单一试剂法绘制唾液酸标准曲线 | 第30页 |
3.1.2 内标法计算测量误差 | 第30-31页 |
3.1.3 糖类物质对单一试剂法的干扰 | 第31-32页 |
3.1.4 酶反应曲线的绘制 | 第32页 |
3.2 菌种的选择 | 第32-34页 |
3.2.1 利用酪蛋白作为发酵培养基 | 第32-33页 |
3.2.2 利用chalaza作为发酵培养基 | 第33-34页 |
3.2.3 四种菌利用chalaza发酵后产物的测定 | 第34页 |
3.3 S_8 生长曲线及产酶曲线 | 第34-36页 |
3.3.1 S_8生长曲线 | 第34-35页 |
3.3.2 S_8产酶曲线 | 第35-36页 |
3.4 底物反应形式的确定 | 第36-37页 |
3.4.1 被搅碎的底物在自来水体系中的酶反应 | 第36页 |
3.4.2 被搅碎的底物在缓冲液体系中的酶反应 | 第36-37页 |
3.4.3 被搅碎并稀释的底物在缓冲液体系中的酶反应 | 第37页 |
3.5 粗酶的酶学性质 | 第37-41页 |
3.5.1 酶反应最适温度的确定 | 第37-38页 |
3.5.2 酶反应最适pH的确定 | 第38页 |
3.5.3 酶的温度稳定性的测定 | 第38-39页 |
3.5.4 酶的pH稳定性的测定 | 第39页 |
3.5.5 酶反应最适底物浓度的确定 | 第39-40页 |
3.5.6 酶反应最适缓冲溶液的确定 | 第40页 |
3.5.7 金属离子对酶活力的影响 | 第40-41页 |
3.6 产唾液酸的最适工艺条件探索 | 第41-44页 |
3.6.1 反应途径 | 第41-43页 |
3.6.2 最适底物量的确定 | 第43页 |
3.6.3 反应时间的确定 | 第43-44页 |
3.7 最适工艺条件下的产物分析 | 第44-48页 |
3.7.1 还原糖标准曲线绘制 | 第44页 |
3.7.2 总糖标准曲线绘制 | 第44-45页 |
3.7.3 氨基酸标准曲线的绘制 | 第45-46页 |
3.7.4 蛋白质标准曲线的绘制 | 第46页 |
3.7.5 产物测定结果 | 第46-48页 |
第四章 实验结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-53页 |
致谢 | 第53页 |