| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 传统生物萃取分离方法及存在的问题 | 第14页 |
| 1.2 双水相体系萃取研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2.1 双水相体系的定义和特点 | 第14页 |
| 1.2.2 双水相体系的成相机理 | 第14页 |
| 1.2.3 影响双水相萃取的因素 | 第14-15页 |
| 1.2.4 双水相体系的萃取原理以及应用 | 第15页 |
| 1.2.5 双水相体系存在的问题 | 第15页 |
| 1.3 离子液简介 | 第15-16页 |
| 1.3.1 离子液的概念和种类 | 第15页 |
| 1.3.2 离子液的性质 | 第15-16页 |
| 1.3.3 离子液的应用 | 第16页 |
| 1.3.4 离子液的问题与展望 | 第16页 |
| 1.4 离子液双水相体系 | 第16-20页 |
| 1.4.1 离子液双水相体系的概述和特点 | 第16-17页 |
| 1.4.2 离子液双水相体系的种类 | 第17-18页 |
| 1.4.3 离子液双水相萃取原理 | 第18页 |
| 1.4.4 离子液双水相体系在生物萃取上的应用 | 第18-20页 |
| 1.5 本论文的研究意义和内容 | 第20-22页 |
| 1.5.1 研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 PEG600/NaH_2PO_4/ILs双水相体系的构建及应用 | 第22-38页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 材料和仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 相图的绘制 | 第23-24页 |
| 2.3.2 紫外法测定L-苯丙氨酸含量 | 第24-25页 |
| 2.3.3 紫外法测定离子液浓度 | 第25-26页 |
| 2.3.4 双水相体系萃取L-苯丙氨酸 | 第26-27页 |
| 2.3.5 pH值的测定 | 第27页 |
| 2.3.6 在不同的温度下萃取L-苯丙氨酸 | 第27页 |
| 2.3.7 数据统计与分析方法 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-36页 |
| 2.4.1 相图 | 第28-30页 |
| 2.4.2 离子液在双水相体系中的分区 | 第30-31页 |
| 2.4.3 L-苯丙氨酸在双水相体系中的分区 | 第31-33页 |
| 2.4.4 温度对L-苯丙氨酸在双水相体系中分区的影响 | 第33-36页 |
| 2.5 小结 | 第36-38页 |
| 第三章 PEG400/NaH_2PO_4/ILs双水相体系的构建及应用 | 第38-56页 |
| 3.1 前言 | 第38页 |
| 3.2 材料和仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.1 试剂 | 第39页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第39页 |
| 3.3 试验方法 | 第39-42页 |
| 3.3.1 相图的绘制 | 第39-40页 |
| 3.3.2 双水相体系萃取木瓜蛋白酶 | 第40-41页 |
| 3.3.3 紫外法测定木瓜蛋白酶含量 | 第41页 |
| 3.3.4 pH值的测定 | 第41页 |
| 3.3.5 双水相萃取机理分析 | 第41-42页 |
| 3.3.6 数据统计与分析方法 | 第42页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第42-54页 |
| 3.4.1 体系的构建 | 第42-43页 |
| 3.4.2 PEG400浓度对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.3 盐浓度对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.4 离子液种类对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.5 离子液浓度对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.6 温度对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.7 蛋白浓度对体系萃取木瓜蛋白酶的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.8 双水相萃取木瓜蛋白酶机理分析 | 第49-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 离子液串联双水相体系的构建及萃取应用 | 第56-71页 |
| 4.1 前言 | 第56页 |
| 4.2 材料和仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.1 材料 | 第56-57页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第57页 |
| 4.3 试验方法 | 第57-60页 |
| 4.3.1 双水相体系相图的绘制 | 第57-58页 |
| 4.3.2 紫外法测定丁香酸含量 | 第58页 |
| 4.3.3 双水相体系萃取丁香酸 | 第58-59页 |
| 4.3.4 pH的测定 | 第59页 |
| 4.3.5 反萃取和离子液回收程序 | 第59-60页 |
| 4.3.6 该体系对于咖啡酸的萃取 | 第60页 |
| 4.3.7 数据统计与分析方法 | 第60页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第60-69页 |
| 4.4.1 相图 | 第60-61页 |
| 4.4.2 盐的种类对ILATPS萃取丁香酸的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.3 盐浓度对ILATPS萃取丁香酸的影响 | 第62-64页 |
| 4.4.4 离子液浓度对ILATPS萃取丁香酸的影响 | 第64-65页 |
| 4.4.5 温度对ILATPS萃取丁香酸的影响 | 第65-66页 |
| 4.4.6 丁香酸浓度对ILATPS萃取丁香酸的影响 | 第66-67页 |
| 4.4.7 反萃取实验以及离子液回收 | 第67-68页 |
| 4.4.8 离子液的重复利用 | 第68-69页 |
| 4.4.9 运用该体系萃取咖啡酸 | 第69页 |
| 4.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 第五章 结论与展望 | 第71-75页 |
| 5.1 结论 | 第71-73页 |
| 5.2 展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第86页 |
