中文摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
前言 | 第15-18页 |
研究现状、成果 | 第15-17页 |
研究目的、方法 | 第17-18页 |
第一部分:纳米载体的制备及其性能研究 | 第18-31页 |
1.1 对象及方法 | 第18-23页 |
1.1.1 主要试剂及仪器 | 第18-19页 |
1.1.2 纳米载体的制备方法 | 第19-21页 |
1.1.3 纳米载体的核素~(131)I标记及放化纯测定 | 第21-22页 |
1.1.4 纳米载体的结构表征 | 第22页 |
1.1.5 载药量,包封率及体外药物释放 | 第22-23页 |
1.2 结果 | 第23-26页 |
1.2.1 纳米载体的表征 | 第23-25页 |
1.2.2 氯胺T法标记MSNs及其标记率和放化纯测定 | 第25-26页 |
1.2.3 载药量,包封率及体外药物释放 | 第26页 |
1.3 讨论 | 第26-30页 |
1.3.1 纳米载体 | 第26-27页 |
1.3.2 VEGFR介导的靶向治疗 | 第27-29页 |
1.3.3 放射性核素的标记方法 | 第29-30页 |
1.4 小结 | 第30-31页 |
第二部分:核素纳米载体的细胞水平实验 | 第31-47页 |
2.1 对象及方法 | 第31-37页 |
2.1.1 材料、试剂及仪器 | 第31-33页 |
2.1.2 细胞培养 | 第33-35页 |
2.1.3 两种药物联合作用的MTS实验 | 第35-36页 |
2.1.4 两种细胞对纳米载体的胞内摄取-共聚焦实验 | 第36页 |
2.1.5 两种细胞对~(131)I标记纳米载体的核素胞内摄取定量实验 | 第36-37页 |
2.2 结果 | 第37-42页 |
2.2.1 17-AAG与Torin2的联合作用 | 第37页 |
2.2.2 两种细胞对纳米载体的胞内摄取-共聚焦实验 | 第37-39页 |
2.2.3 两种细胞对~(131)I标记的纳米载体的胞内摄取定量实验 | 第39-42页 |
2.3 讨论 | 第42-45页 |
2.3.1 HSP90抑制剂17-AAG | 第42-43页 |
2.3.2 Torin2 | 第43-44页 |
2.3.3 纳米载体的主动靶向验证 | 第44-45页 |
2.3.4 ATC细胞对~(131)I标记纳米载体的核素胞内摄取定量实验 | 第45页 |
2.4 小结 | 第45-47页 |
第三部分:核素纳米载体的体内动物实验 | 第47-71页 |
3.1 对象及方法 | 第48-53页 |
3.1.1 材料、试剂及仪器 | 第48-49页 |
3.1.2 实验动物 | 第49-50页 |
3.1.3 荷FRO瘤裸鼠模型的建立 | 第50页 |
3.1.4 实验裸鼠分组 | 第50页 |
3.1.5 荷瘤鼠SPECT/CT显像 | 第50-51页 |
3.1.6 荷瘤鼠~(131)I体内组织分布实验 | 第51-52页 |
3.1.7 荷瘤裸鼠治疗效果观察 | 第52页 |
3.1.8 生存分析 | 第52页 |
3.1.9 组织病理 | 第52-53页 |
3.1.10 免疫组化 | 第53页 |
3.2 结果 | 第53-64页 |
3.2.1 荷瘤裸鼠模型建立 | 第53-54页 |
3.2.2 荷瘤裸鼠SPECT/CT显像 | 第54-56页 |
3.2.3 放射性核素在荷瘤鼠体内的组织分布 | 第56-58页 |
3.2.4 体重变化情况 | 第58-59页 |
3.2.5 肿瘤体积变化情况 | 第59-60页 |
3.2.6 生存曲线分析 | 第60-61页 |
3.2.7 组织病理切片分析 | 第61-64页 |
3.3 讨论 | 第64-69页 |
3.3.1 裸鼠的医学地位 | 第64-65页 |
3.3.2 以VEGF/VEGFR信号通路为靶点的抗肿瘤治疗 | 第65-66页 |
3.3.3 纳米药物提呈系统在肿瘤治疗中的优势 | 第66-67页 |
3.3.4 ~(131)I标记纳米载体治疗恶性肿瘤 | 第67-69页 |
3.3.5 介孔二氧化硅纳米粒的安全性 | 第69页 |
3.4 小结 | 第69-70页 |
3.5 结论 | 第70-71页 |
全文结论 | 第71-72页 |
论文创新点 | 第72-73页 |
本研究中的不足 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-84页 |
发表论文和参加科研情况 | 第84-86页 |
综述 介孔二氧化硅纳米粒在肿瘤靶向治疗中的研究进展 | 第86-106页 |
综述参考文献 | 第99-106页 |
致谢 | 第106-108页 |
个人简介 | 第108页 |