摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
符号说明 | 第11-12页 |
第1章 绪论 | 第12-22页 |
1.1 过氧化物模拟酶 | 第12-13页 |
1.2 过氧化物模拟酶的应用 | 第13-19页 |
1.2.1 H_2O_2的检测 | 第13-14页 |
1.2.2 偶联特异性氧化酶检测特征底物 | 第14-15页 |
1.2.3 过氧化物模拟酶活性抑制剂的检测 | 第15页 |
1.2.4 强还原性物质的检测 | 第15-16页 |
1.2.5 免疫检测 | 第16-17页 |
1.2.6 病原微生物的检测 | 第17-18页 |
1.2.7 有机污染物的降解 | 第18页 |
1.2.8 有机磷农药残留的检测 | 第18-19页 |
1.3 无花果蛋白酶 | 第19-20页 |
1.4 本论文的研究内容及意义 | 第20-22页 |
第2章 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性检测葡萄糖 | 第22-34页 |
2.1 引言 | 第22-23页 |
2.2 实验部分 | 第23-25页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第23-24页 |
2.2.2 SiO_2@Fe_3O_4NPs偶联无花果蛋白酶(SiO_2@Fe_3O_4-ficinNPs) | 第24页 |
2.2.3 基于无花果蛋白酶和葡萄糖氧化酶(GOx)比色检测葡萄糖 | 第24-25页 |
2.2.4 血清中葡萄糖的测定 | 第25页 |
2.3 结果与讨论 | 第25-32页 |
2.3.1 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性检测葡萄糖的可行性研究 | 第25-26页 |
2.3.2 葡萄糖检测条件优化 | 第26-27页 |
2.3.3 葡萄糖的定量检测 | 第27-28页 |
2.3.4 方法选择性 | 第28-29页 |
2.3.5 SiO_2@Fe_3O_4-ficinNPs的表征 | 第29-31页 |
2.3.6 SiO_2@Fe_3O_4-ficinNPs的循环利用 | 第31页 |
2.3.7 血清样品中葡萄糖的测定 | 第31-32页 |
2.4 结论 | 第32-34页 |
第3章 基于Ficin-H_2O_2-酪胺体系的竞争反应荧光检测多巴胺 | 第34-44页 |
3.1 引言 | 第34-35页 |
3.2 实验部分 | 第35-36页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第35-36页 |
3.2.2 多巴胺的测定 | 第36页 |
3.2.3 方法选择性 | 第36页 |
3.2.4 脑脊液中多巴胺的测定 | 第36页 |
3.3 结果与讨论 | 第36-42页 |
3.3.1 基于Ficin-H_2O_2-酪胺体系检测多巴胺的可行性研究 | 第36-37页 |
3.3.2 多巴胺检测机理研究 | 第37-38页 |
3.3.3 多巴胺检测条件优化 | 第38-39页 |
3.3.4 多巴胺的定量检测 | 第39-40页 |
3.3.5 方法选择性 | 第40-41页 |
3.3.6 脑脊液样品中多巴胺的测定 | 第41-42页 |
3.4 结论 | 第42-44页 |
第4章 基于无花果蛋白酶过氧化物模拟酶活性合成荧光聚多巴胺纳米粒子用于多巴胺检测 | 第44-56页 |
4.1 引言 | 第44-45页 |
4.2 实验部分 | 第45-47页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第45-46页 |
4.2.2 电子自磁共振(ESR)实验 | 第46页 |
4.2.3 多巴胺的检测 | 第46页 |
4.2.4 方法的选择性 | 第46-47页 |
4.2.5 人血清样品处理 | 第47页 |
4.3 结果与讨论 | 第47-54页 |
4.3.1 多巴胺检测的可行性及机理研究 | 第47-48页 |
4.3.2 荧光聚多巴胺纳米材料的表征 | 第48-49页 |
4.3.3 荧光聚多巴胺的光谱性质及稳定性研究 | 第49-50页 |
4.3.4 多巴胺检测的条件优化 | 第50-52页 |
4.3.5 多巴胺的定量检测 | 第52-53页 |
4.3.6 多巴胺测定的选择性 | 第53-54页 |
4.3.7 人血清样品中多巴胺的测定 | 第54页 |
4.4 结论 | 第54-56页 |
第5章 全文总结与展望 | 第56-58页 |
5.1 全文总结 | 第56页 |
5.2 展望 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-70页 |
硕士期间已发表的研究成果 | 第70-72页 |
致谢 | 第72页 |