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马氏珠母贝类胡萝卜素代谢相关基因的筛选及SNP分析

摘要第4-6页
abstract第6-7页
1 文献综述第10-18页
    1.1 类胡萝卜素结构、分布与功能第10页
    1.2 水产动物体内类胡萝卜素的研究进展第10-11页
    1.3 类胡萝卜素在动物体内的转运与代谢第11-12页
    1.4 新一代高通量测序技术的转录组测序(RNA-seq)第12-13页
        1.4.1 新一代高通量测序技术简介第12-13页
        1.4.2 新一代高通量测序技术的转录组测序的应用第13页
    1.5 单核苷酸多态性(SNP)简介与应用第13-16页
        1.5.1 单核苷酸多态性的特点第13-14页
        1.5.2 单核苷酸多态性分型方法第14-15页
        1.5.3 SNP在水产动物遗传学与育种学研究中的运用第15-16页
    1.6 贝类类胡萝卜素抗逆性的研究第16页
    1.7 本研究的目的及意义第16-17页
    1.8 本研究的技术路线第17-18页
2 RNA-seq技术筛选类胡萝卜素代谢相关差异基因第18-31页
    2.1 材料与方法第18-21页
        2.1.1 实验材料第18页
        2.1.2 实验方法第18-21页
    2.2 实验结果与分析第21-29页
        2.2.1 类胡萝卜素含量与RNA质量的检测第21-23页
        2.2.2 测序结果及质量分析第23-29页
    2.3 讨论第29-31页
3 马氏珠母贝类胡萝卜素代谢相关基因的克隆和表达分析第31-55页
    3.1 材料与方法第31-39页
        3.1.1 实验材料第31-32页
        3.1.2 实验方法第32-39页
    3.2 实验结果与分析第39-52页
        3.2.1 候选基因的克隆第39-46页
        3.2.2 候选基因的生物学信息分析第46-52页
    3.3 候选基因的组织特异性表达分析第52页
    3.4 讨论第52-55页
4 PmSR-BI-b和PmβCDIOX基因SNPs的筛选及与类胡萝卜素含量的关联性分析第55-73页
    4.1 实验材料第55页
        4.1.1 实验动物第55页
        4.1.2 主要试剂第55页
        4.1.3 主要仪器第55页
    4.2 实验方法第55-60页
        4.2.1 基因组DNA提取第55页
        4.2.2 闭壳肌总类胡萝卜素的提取第55页
        4.2.3 PmSR-BI-b和PmβCDIOX外显子区与5′调控区重测序实验第55-60页
        4.2.4 SNP位点与类胡萝卜素含量相关性分析第60页
    4.3 实验结果与分析第60-70页
        4.3.1 PmSR-BI-b外显子区和5′调控区SNP位点的遗传多态性分析第60-63页
        4.3.2 PmSR-BI-b基因SNP位点的连锁不平衡分析第63页
        4.3.3 PmSR-BI-b基因位点及单倍型与类胡萝卜素含量的关联分析第63-65页
        4.3.4 PmβCDIOX基因外显子区和5′调控区SNP位点的遗传多态性分析第65-68页
        4.3.5 PmβCDIOX基因SNP位点的连锁不平衡分析第68页
        4.3.6 PmβCDIOX基因位点及单倍型与类胡萝卜素含量的关联分析第68-70页
    4.4 讨论第70-73页
5 外显子区非同义突变点的验证第73-77页
    5.1 材料与方法第73-74页
        5.1.1 实验材料第73页
        5.1.2 实验方法第73-74页
    5.2 实验结果与分析第74-75页
        5.2.1 PmSR-BI-b基因位点g.87315G>A的验证第74-75页
        5.2.2 PmβCDIOX位点g.204216T>A的验证第75页
    5.3 讨论第75-77页
6 结论第77-78页
参考文献第78-89页
附录1 PmSR-BI-b外显子区和5′调控区引物序列第89-91页
附录2 PmβCDIOX外显子区物序列第91-92页
附录3 PmβCDIOX5′调控区引物序列第92-93页
附录4 PmSR-BI-b基因分型电泳图第93-95页
附录5 PmβCDIOX基因分型电泳图第95-97页
致谢第97-98页
作者简介第98-99页
导师简介第99页

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