狗脊多糖的分离纯化及生物活性研究
中文摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
第一章 前言 | 第8-23页 |
1.1 狗脊的研究价值 | 第8-9页 |
1.1.1 狗脊简介 | 第8页 |
1.1.2 狗脊的药用价值 | 第8-9页 |
1.2 狗脊多糖的研究现状 | 第9-10页 |
1.3 多糖的研究状况 | 第10-22页 |
1.3.1 多糖的定义、来源和分布 | 第10-11页 |
1.3.2 多糖的生物活性 | 第11-13页 |
1.3.3 多糖的构效关系 | 第13-15页 |
1.3.4 多糖的提取 | 第15-17页 |
1.3.5 多糖的分离 | 第17-19页 |
1.3.6 多糖的纯化 | 第19-20页 |
1.3.7 多糖的纯度验证及分子量测定 | 第20-21页 |
1.3.8 多糖的结构鉴定 | 第21-22页 |
1.4 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
第二章 狗脊多糖的提取、分离和纯化 | 第23-41页 |
2.1 材料与仪器 | 第23页 |
2.1.1 实验仪器 | 第23页 |
2.1.2 试剂 | 第23页 |
2.1.3 药材 | 第23页 |
2.2 实验方法 | 第23-29页 |
2.2.1 粗多糖的提取 | 第23-26页 |
2.2.2 利用响应曲面法进行多糖提取工艺优化 | 第26-27页 |
2.2.3 除蛋白 | 第27页 |
2.2.4 粗多糖的糖含量测定 | 第27页 |
2.2.5 粗多糖分离纯化 | 第27-28页 |
2.2.6 狗脊多糖的纯度验证 | 第28-29页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第29-40页 |
2.3.1 粗多糖的糖含量测定 | 第29页 |
2.3.2 利用响应曲面法进行多糖提取工艺优化 | 第29-34页 |
2.3.3 各部分粗多糖的分离纯化 | 第34-39页 |
2.3.4 狗脊多糖的纯度验证 | 第39-40页 |
2.4 小结 | 第40-41页 |
第三章 狗脊多糖的结构研究 | 第41-49页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第41页 |
3.1.1 实验试剂 | 第41页 |
3.1.2 实验仪器 | 第41页 |
3.2 实验方法 | 第41-44页 |
3.2.1 气相色谱分析单糖组成 | 第41-42页 |
3.2.2 PMP柱前衍生化高效液相色谱分析 | 第42-43页 |
3.2.3 红外光谱分析 | 第43页 |
3.2.4 多糖甲基化分析 | 第43页 |
3.2.5 多糖的核磁共振分析 | 第43-44页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第44-48页 |
3.3.1 单糖组成分析 | 第44-47页 |
3.3.2 红外光谱分析 | 第47-48页 |
3.3.3 核磁共振波谱 | 第48页 |
3.4 小结 | 第48-49页 |
第四章 狗脊多糖的结构修饰 | 第49-51页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第49页 |
4.1.1 实验材料 | 第49页 |
4.1.2 实验仪器 | 第49页 |
4.2 实验方法 | 第49-50页 |
4.2.1 羧甲基化多糖的制备 | 第49页 |
4.2.2 狗脊多糖硫酸酯化 | 第49-50页 |
4.2.3 羧甲基化、硫酸酯化多糖的溶解性 | 第50页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第50-51页 |
第五章 多糖的体外活性测试 | 第51-57页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第51页 |
5.1.1 实验材料 | 第51页 |
5.1.2 实验仪器 | 第51页 |
5.2 实验方法 | 第51-52页 |
5.2.1 狗脊多糖抗氧化活性测试 | 第51-52页 |
5.3 实验结果 | 第52-55页 |
5.3.1 狗脊多糖对DPPH的清除能力 | 第52-54页 |
5.3.2 狗脊多糖对OH自由基的清除能力 | 第54-55页 |
5.4 小结 | 第55-57页 |
第六章 多糖的体内抗骨质疏松活性 | 第57-64页 |
6.1 实验材料与仪器 | 第57页 |
6.1.1 实验材料 | 第57页 |
6.1.2 实验仪器 | 第57页 |
6.2 实验方法 | 第57-59页 |
6.2.1 分组 | 第57-58页 |
6.2.2 造模方法及指标的检测 | 第58-59页 |
6.3 实验结果 | 第59-63页 |
6.4 小结 | 第63-64页 |
第七章 结论与展望 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
已发表论文 | 第71-72页 |
致谢 | 第72页 |