| 缩略词表 | 第3-4页 |
| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 前言 | 第9-22页 |
| 1.1 油菜素内酯调控植物生长发育 | 第9-15页 |
| 1.1.1 油菜素内酯的发现 | 第9页 |
| 1.1.2 油菜素内酯的合成途径与信号途径 | 第9-10页 |
| 1.1.3 油菜素内酯调控植物细胞伸长 | 第10-11页 |
| 1.1.4 油菜素内酯对植物其他方面生长发育的影响 | 第11-15页 |
| 1.2 生长素在植物细胞伸长中发挥作用 | 第15-16页 |
| 1.3 光与赤霉素调控植物细胞伸长 | 第16-18页 |
| 1.3.1 光信号途径 | 第16-17页 |
| 1.3.2 光和赤霉素共同影响幼苗的光形态建成 | 第17-18页 |
| 1.4 多种植物激素和环境信号共同调控植物细胞伸长 | 第18-19页 |
| 1.5 植物均一化全长cDNA文库的构建 | 第19-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-38页 |
| 2.1 拟南芥野生型幼苗cDNA文库的构建 | 第22-28页 |
| 2.1.1 植物材料的准备 | 第22页 |
| 2.1.2 幼苗总RNA的提取 | 第22页 |
| 2.1.3 mRNA的分离 | 第22页 |
| 2.1.4 cDNA文库的构建 | 第22-28页 |
| 2.2 突变体的遗传筛选 | 第28-31页 |
| 2.2.1 农杆菌电击转化 | 第28页 |
| 2.2.2 拟南芥转化 | 第28页 |
| 2.2.3 转基因拟南芥筛选 | 第28-29页 |
| 2.2.4 突变体基因克隆 | 第29-30页 |
| 2.2.5 突变体表型重现 | 第30-31页 |
| 2.3 其他相关实验 | 第31-33页 |
| 2.3.1 RNA反转录及RT-PCR | 第31-32页 |
| 2.3.2 Real-time PCR定量检测 | 第32页 |
| 2.3.3 酵母双杂交 | 第32-33页 |
| 2.4 引物合成与DNA测序 | 第33-35页 |
| 2.5 实验中涉及到的载体及其图谱 | 第35-38页 |
| 第三章 结果与分析 | 第38-57页 |
| 3.1 拟南芥野生型幼苗全长cDNA文库的构建 | 第38-41页 |
| 3.1.1 拟南芥Col-0 10天幼苗mRNA反转录及LD-PCR扩增 | 第38页 |
| 3.1.2 cDNA的均一化 | 第38-39页 |
| 3.1.3 均一化cDNA的分级分离 | 第39-40页 |
| 3.1.4 Gateway体外重组以及cDNA文库质量分析 | 第40-41页 |
| 3.2 拟南芥幼苗cDNA超表达文库筛选 | 第41-47页 |
| 3.2.1 M11突变体表型分析 | 第41-42页 |
| 3.2.2 M13突变体表型分析 | 第42-43页 |
| 3.2.3 M18突变体表型观察 | 第43页 |
| 3.2.4 M22突变体表型观察 | 第43-44页 |
| 3.2.5 M23突变体表型观察 | 第44页 |
| 3.2.6 M24突变体表型观察 | 第44-45页 |
| 3.2.7 M26突变体表型分析 | 第45页 |
| 3.2.8 M27突变体表型观察 | 第45-46页 |
| 3.2.9 M28、M29、M30突变体表型观察 | 第46-47页 |
| 3.3 核蛋白基因BSE1的过量表达导致M30的表型 | 第47-57页 |
| 3.3.1 M30突变体叶柄伸长是由于叶柄细胞伸长 | 第48-49页 |
| 3.3.2 M30突变体的下胚轴和根都比bril-5的长 | 第49页 |
| 3.3.3 BSE1功能缺失突变体的表型分析 | 第49-50页 |
| 3.3.4 BSE1不参与油菜素内酯合成与信号途径 | 第50-52页 |
| 3.3.5 BSE1不通过生长素和赤霉素信号途径调控细胞伸长 | 第52-53页 |
| 3.3.6 M30突变体中PREs和EXPANSINs基因上调表达 | 第53-54页 |
| 3.3.7 通过酵母双杂交筛选BSE1相互作用蛋白 | 第54-57页 |
| 第四章 讨论 | 第57-60页 |
| 4.1 超表达cDNA文库方法可以促进很多新的发现 | 第57-58页 |
| 4.2 BSE1与PREs上游的某个转录抑制子相互作用控制细胞伸长 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
