| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-19页 |
| 1.1 中药发酵 | 第13-16页 |
| 1.1.1 中药发酵的特点 | 第13-14页 |
| 1.1.2 中药发酵前景 | 第14-15页 |
| 1.1.3 发酵对黄芪药理作用的影响 | 第15-16页 |
| 1.2 树突状细胞 | 第16-18页 |
| 1.2.1 树突状细胞的研究进展 | 第16页 |
| 1.2.2 黄芪多糖对树突状细胞免疫活性的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3 研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 黄芪发酵的工艺优化 | 第19-31页 |
| 2.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.1 菌种 | 第19页 |
| 2.1.2 培养基 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第19页 |
| 2.2 方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 细菌的活化 | 第19-20页 |
| 2.2.2 传代次数的确定 | 第20页 |
| 2.2.3 单因素试验 | 第20页 |
| 2.2.4 正交试验 | 第20-21页 |
| 2.2.5 工艺验证试验 | 第21页 |
| 2.3 结果 | 第21-29页 |
| 2.3.1 细菌活化 | 第21页 |
| 2.3.2 细菌传代次数的确定 | 第21-23页 |
| 2.3.3 发酵时间对FAPS产量的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 温度对FAPS产量的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.5 接菌量对FAPS产量的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.6 pH对FAPS产量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.7 正交实验结果 | 第27-29页 |
| 2.3.8 稳定性试验结果 | 第29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 发酵黄芪多糖的提取及纯化 | 第31-36页 |
| 3.1 材料 | 第31页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第31页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第31页 |
| 3.2 方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 水提醇沉法提取发酵黄芪多糖 | 第31页 |
| 3.2.2 蛋白质的去除 | 第31-32页 |
| 3.2.3 无机盐的去除 | 第32页 |
| 3.2.4 离子交换柱层析纯化发酵黄芪和生药黄芪多糖 | 第32页 |
| 3.2.5 分子筛柱层析纯化发酵黄芪和生药黄芪多糖 | 第32页 |
| 3.2.6 苯酚-硫酸法测定多糖含量 | 第32-33页 |
| 3.3 结果 | 第33-35页 |
| 3.3.1 粗多糖的提取 | 第33-34页 |
| 3.3.2 多糖的纯化 | 第34-35页 |
| 3.3.3 苯酚硫酸法测定多糖含量 | 第35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-36页 |
| 第四章 发酵黄芪多糖对小鼠树突状细胞体外成熟的影响 | 第36-50页 |
| 4.1 材料 | 第36-37页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第36页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 4.1.3 主要试剂的配制和制备 | 第36-37页 |
| 4.1.4 主要仪器和设备 | 第37页 |
| 4.2 方法 | 第37-40页 |
| 4.2.1 FAPS和APS的提取 | 第37页 |
| 4.2.2 源于小鼠骨髓树突状细胞的体外培养和纯化 | 第37-38页 |
| 4.2.3 FAPS安全剂量的确定 | 第38页 |
| 4.2.4 共孵育 | 第38页 |
| 4.2.5 BMDCs的形态学观察 | 第38页 |
| 4.2.6 ACP酶的测定 | 第38-39页 |
| 4.2.7 DC表型检测 | 第39页 |
| 4.2.8 细胞因子的检测 | 第39页 |
| 4.2.9 统计学分析 | 第39-40页 |
| 4.3 结果 | 第40-47页 |
| 4.3.1 FAPS安全剂量的确定 | 第40-41页 |
| 4.3.2 BMDCs的形态观察结果 | 第41-42页 |
| 4.3.3 ACP的测定结果 | 第42-43页 |
| 4.3.4 FAPS对表型MHC-Ⅱ,CD80,CD83以及CD86的影响 | 第43-45页 |
| 4.3.5 FAPS对细胞因子IL-12,IL-6,IFN-γ和TNF-α的影响 | 第45-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简历 | 第57页 |
