| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第13-28页 |
| 1.1 肠道菌群 | 第13-15页 |
| 1.1.1 肠道菌群组成 | 第13-14页 |
| 1.1.2 肠道菌群的特点及作用 | 第14页 |
| 1.1.3 菌群在肠道致病菌感染中的作用 | 第14-15页 |
| 1.2 沙门氏菌感染 | 第15-17页 |
| 1.2.1 沙门氏菌的发现与分类 | 第15-16页 |
| 1.2.2 沙门氏菌入侵机制 | 第16-17页 |
| 1.2.3 沙门氏菌在组织中的定植与系统性传播 | 第17页 |
| 1.3 小肠潘氏细胞 | 第17-19页 |
| 1.3.1 潘氏细胞的发育 | 第18页 |
| 1.3.2 颗粒释放调节 | 第18页 |
| 1.3.3 潘氏细胞与肠道致病菌 | 第18页 |
| 1.3.4 潘氏细胞与宿主菌群 | 第18-19页 |
| 1.4 肠道中的抗菌肽 | 第19-23页 |
| 1.4.1 抗菌肽发挥抗菌作用的机制 | 第19-20页 |
| 1.4.2 肠道中抗菌肽的主要分类 | 第20页 |
| 1.4.2.1 防御素 | 第20页 |
| 1.4.2.2 C型凝集素 | 第20页 |
| 1.4.3 上皮中抗菌肽的转录调节 | 第20-22页 |
| 1.4.4 上皮中抗菌肽的翻译调节 | 第22页 |
| 1.4.5 上皮中抗菌肽的分泌 | 第22页 |
| 1.4.6 抗菌肽在机体中的功能 | 第22-23页 |
| 1.5 淋巴细胞在沙门氏菌感染中的作用 | 第23-25页 |
| 1.5.1 固有淋巴细胞及其亚型 | 第23-25页 |
| 1.5.1.1 ILC3调控胃肠道感染并促进癌症 | 第24页 |
| 1.5.1.2 IL-22在细菌感染中的作用 | 第24-25页 |
| 1.6 树突状细胞 | 第25-28页 |
| 1.6.1 起源与分类 | 第25-26页 |
| 1.6.2 肠道DC及其亚群 | 第26-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-32页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.1.1.1 常规实验动物 | 第28页 |
| 2.1.1.2 相关的基因敲除小鼠 | 第28页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第28-31页 |
| 2.1.2.1 常规实验试剂 | 第28页 |
| 2.1.2.2 实验试剂的配制 | 第28-31页 |
| 2.1.2.3 小鼠鉴定所需相关试剂及配制 | 第31页 |
| 2.1.3 流式细胞仪检测所需的抗体 | 第31页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-41页 |
| 2.2.1 动物模型的建立 | 第32页 |
| 2.2.1.1 培养鼠伤寒沙门氏菌 | 第32页 |
| 2.2.1.2 感染实验小鼠 | 第32页 |
| 2.2.2 常规实验方法 | 第32-41页 |
| 2.2.2.1 小鼠鉴定 | 第32-34页 |
| 2.2.2.2 单细胞悬液的制备 | 第34-36页 |
| 2.2.2.3 荧光抗体标记 | 第36-38页 |
| 2.2.2.4 细胞提取RNA法 | 第38-39页 |
| 2.2.2.5 组织提取RNA法 | 第39页 |
| 2.2.2.6 RNA反转录 | 第39-40页 |
| 2.2.2.7 荧光定量PCR操作步骤 | 第40页 |
| 2.2.2.8 酶联免疫吸附试验(Elisa) | 第40-41页 |
| 2.3 实验数据的分析与统计 | 第41-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-60页 |
| 3.1 构建Villin~(cre)x MyD88~(FL/FL)小鼠 | 第42-44页 |
| 3.2 鼠伤寒沙门氏菌感染对Villin~(cre)x MyD88~(FL/FL)小鼠的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 鼠伤寒沙门氏菌感染后细胞因子的变化 | 第45-47页 |
| 3.4 S. Typhi感染对抗菌肽表达的影响 | 第47-50页 |
| 3.5 在感染状态下肠道抗菌肽的分泌受IL-22调节 | 第50-52页 |
| 3.6 感染状态下机体内各细胞的比例及数量变化 | 第52-56页 |
| 3.7 沙门氏菌感染状态下的树突状细胞及其亚群、巨噬细胞对机体的调节作用 | 第56-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| 5 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
