| 摘要 | 第11-13页 |
| ABSTRACT | 第13-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 符号与缩略语说明 | 第18-19页 |
| 第一部分 文献综述 | 第19-48页 |
| 第一节 磺酰脲类除草剂的研究现状 | 第19-33页 |
| 1 磺酰脲类除草剂简介 | 第19-20页 |
| 2 磺酰脲类除草剂的作用机理 | 第20-23页 |
| 3 磺酰脲类除草剂的药害 | 第23-25页 |
| 3.1 磺酰脲类除草剂对后茬作物的药害 | 第23页 |
| 3.2 磺酰脲类除草剂药害发生情况 | 第23-24页 |
| 3.3 磺酰脲类除草剂对其它环境生物的影响 | 第24-25页 |
| 4 磺酰脲类除草剂的降解研究 | 第25-29页 |
| 4.1 磺酰脲类除草剂的微生物降解 | 第25-27页 |
| 4.2 磺酰脲类除草剂的化学水解 | 第27-29页 |
| 4.3 磺酰脲类除草剂的光解 | 第29页 |
| 5 磺酰脲类除草剂的检测 | 第29-33页 |
| 5.1 化学分析法 | 第29-31页 |
| 5.2 酶联免疫法 | 第31-32页 |
| 5.3 生物分析法 | 第32-33页 |
| 第二节 氯嘧磺隆的研究概况 | 第33-36页 |
| 1 氯嘧磺隆的品种开发简况 | 第33页 |
| 2 氯嘧磺隆的理化特性 | 第33页 |
| 3 氯嘧磺隆的作用机理 | 第33-34页 |
| 4 氯嘧磺隆的环境归宿 | 第34-35页 |
| 4.1 氯嘧磺隆的水解 | 第34页 |
| 4.2 氯嘧磺隆的光解 | 第34页 |
| 4.3 氯嘧磺隆在植物体内的降解 | 第34页 |
| 4.4 土壤微生物对氯嘧磺隆的降解 | 第34-35页 |
| 5 氯嘧磺隆使用存在的问题 | 第35-36页 |
| 第三节 微生物修复研究概况 | 第36-40页 |
| 1 生物修复的定义和分类 | 第36页 |
| 2 微生物修复的作用机制 | 第36-38页 |
| 2.1 矿化作用 | 第36-37页 |
| 2.2 共代谢作用 | 第37页 |
| 2.3 间接作用 | 第37页 |
| 2.4 参与微生物降解作用的生物化学过程 | 第37-38页 |
| 3 微生物修复的影响因素 | 第38页 |
| 3.1 物理化学因素 | 第38页 |
| 3.2 生物化学因素 | 第38页 |
| 4 生物强化技术 | 第38-40页 |
| 4.1 生物强化的种类 | 第39页 |
| 4.2 生物强化技术存在的问题和解决方式 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-48页 |
| 第二部分 实验部分 | 第48-134页 |
| 第一章 氯嘧磺隆降解菌LW4的分离鉴定和降解特性研究 | 第48-89页 |
| 第一节 氯嘧磺隆降解菌LW4分离和鉴定 | 第48-57页 |
| 1 材料与方法 | 第48-52页 |
| 1.1 菌株、农药、试剂及培养基 | 第48-49页 |
| 1.2 降解菌的富集、分离和纯化 | 第49页 |
| 1.3 降解菌的培养特征及生理生化鉴定 | 第49页 |
| 1.4 菌体总DNA的提取 | 第49页 |
| 1.5 分离菌株的16S rDNA的PCR扩增 | 第49-50页 |
| 1.6 PCR产物的T/A克隆 | 第50页 |
| 1.7 高效感受态细胞的制备和转化 | 第50-51页 |
| 1.8 质粒DNA的小量提取 | 第51页 |
| 1.9 16S rDNA的序列测定 | 第51页 |
| 1.10 降解菌的系统发育分析 | 第51页 |
| 1.11 实验仪器 | 第51-52页 |
| 1.12 氯嘧磺隆的检测 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-57页 |
| 2.1 降解菌的分离筛选 | 第52页 |
| 2.2 氯嘧磺隆降解菌的菌落形态和生理生化特征 | 第52-55页 |
| 2.3 LW4菌株的基因组DNA的提取 | 第55页 |
| 2.4 16S rDNA的扩增 | 第55页 |
| 2.5 降解菌株的系统发育分析 | 第55-57页 |
| 第二节 菌株LW4和LW3的生长特性比较研究 | 第57-65页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| 1.1 菌株、试剂与培养基 | 第57页 |
| 1.2 菌种制备及菌体生长量的测定方法 | 第57-58页 |
| 1.3 生长曲线的测定 | 第58页 |
| 1.4 菌株在不同碳、氮源条件下的生长 | 第58页 |
| 1.5 碳氮比对菌株生长的影响 | 第58页 |
| 1.6 温度对菌株生长的影响 | 第58页 |
| 1.7 培养基初始pH值对降解菌生长影响 | 第58-59页 |
| 1.8 通气量对菌株生长的影响 | 第59页 |
| 1.9 菌株的需盐性与耐盐性 | 第59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-65页 |
| 2.1 菌株的生长曲线 | 第59-60页 |
| 2.2 不同碳源对菌株的生长的影响 | 第60页 |
| 2.3 不同氮源对菌株的生长的影响 | 第60-61页 |
| 2.4 碳氮比对菌株生长的影响 | 第61-62页 |
| 2.5 温度对菌株生长的影响 | 第62页 |
| 2.6 培养基初始pH对菌株生长的影响 | 第62-63页 |
| 2.7 通气状况对菌株生长的影响 | 第63-64页 |
| 2.8 菌株的耐盐性与需盐性 | 第64-65页 |
| 第三节 菌株LW4和LW3降解氯嘧磺隆特性的比较研究 | 第65-76页 |
| 1 材料与方法 | 第65-67页 |
| 1.1 菌株、土壤、试剂和培养基 | 第65页 |
| 1.2 菌株的培养和接种 | 第65-66页 |
| 1.3 氯嘧磺隆及其它几种磺酰脲除草剂的检测 | 第66页 |
| 1.4 氯嘧磺隆初始浓度对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第66页 |
| 1.5 温度和初始pH对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第66页 |
| 1.6 通气量和接种量对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第66-67页 |
| 1.7 不同营养物质对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第67页 |
| 1.8 NaCl浓度对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第67页 |
| 1.9 金属离子对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第67页 |
| 1.10 降解菌的降解谱 | 第67页 |
| 1.11 降解菌对土壤中氯嘧磺隆的降解情况 | 第67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-76页 |
| 2.1 降解菌利用氯嘧磺隆作为唯一碳、氮源降解情况 | 第67-69页 |
| 2.2 氯嘧磺隆起始浓度对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第69页 |
| 2.3 温度对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第69-70页 |
| 2.4 初始pH值对菌株降解氯嘧磺隆的影响 | 第70-71页 |
| 2.5 接种量对降解菌降解氯嘧磺隆的影响 | 第71-72页 |
| 2.6 通气量对降解菌降解氯嘧磺隆的影响 | 第72页 |
| 2.7 添加营养物质对降解菌降解氯嘧磺隆的影响 | 第72-73页 |
| 2.8 NaCl浓度对降解菌降解氯嘧磺隆的影响 | 第73页 |
| 2.9 添加金属离子对降解菌降解氯嘧磺隆的影响 | 第73-74页 |
| 2.10 降解菌的降解谱 | 第74-75页 |
| 2.11 降解菌对土壤中氯嘧磺隆的降解 | 第75-76页 |
| 第四节 氯嘧磺隆降解菌株LW4和LW3粗酶特性的初步研究 | 第76-83页 |
| 1 材料与方法 | 第76-78页 |
| 1.1 供试菌株、培养基、试剂及仪器设备 | 第76页 |
| 1.2 菌株的培养 | 第76页 |
| 1.3 氯嘧磺隆含量的检测 | 第76页 |
| 1.4 粗酶液的制备 | 第76-77页 |
| 1.5 降解酶的定位 | 第77页 |
| 1.6 降解酶的类型 | 第77页 |
| 1.7 pH、温度,金属离子对氯嘧磺隆降解酶活性的影响 | 第77-78页 |
| 1.8 pH、温度对氯嘧磺隆降解酶稳定性的影响 | 第78页 |
| 2 结果与分析 | 第78-83页 |
| 2.1 氯嘧磺隆水解酶活性测定方法的建立 | 第78页 |
| 2.2 降解酶的细胞定位 | 第78-79页 |
| 2.3 pH对氯嘧磺隆酶促降解的影响 | 第79-80页 |
| 2.4 温度对氯嘧磺隆酶促降解的影响 | 第80-81页 |
| 2.5 金属离子对氯嘧磺隆酶促降解的影响 | 第81页 |
| 2.6 pH对氯嘧磺隆降解酶稳定性的影响 | 第81-82页 |
| 2.7 温度对氯嘧磺隆降解酶稳定性的影响 | 第82-83页 |
| 3 本章讨论 | 第83-84页 |
| 4 本章小结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 第二章 LW3菌株对氯嘧磺隆降解途径的研究 | 第89-99页 |
| 1 材料与方法 | 第89-90页 |
| 1.1 菌株、培养基和试剂 | 第89页 |
| 1.2 菌种制备 | 第89页 |
| 1.3 降解产物的提取与制备 | 第89-90页 |
| 1.4 提取物检测和定性分析 | 第90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-96页 |
| 2.1 降解产物的HPLC检测 | 第90-92页 |
| 2.2 代谢中间产物的HPLC-MS分析 | 第92-95页 |
| 2.3 代谢途径的推测 | 第95-96页 |
| 3 本章讨论 | 第96页 |
| 4 本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-99页 |
| 第三章 氯嘧磺隆降解菌LW3的生态学效应与应用研究 | 第99-134页 |
| 第一节 氯嘧磺隆对土壤微生物和土壤酶活性的影响 | 第99-112页 |
| 1 材料与方法 | 第99-103页 |
| 1.1 供试农药与土壤 | 第99-100页 |
| 1.2 培养基 | 第100页 |
| 1.3 试验设计与数据处理 | 第100页 |
| 1.4 土壤细菌、放线菌及真菌的计数 | 第100页 |
| 1.5 土壤呼吸强度的测定 | 第100-101页 |
| 1.6 土壤过氧化氢酶活性的测定 | 第101页 |
| 1.7 壤多酚氧化酶活性的测定 | 第101页 |
| 1.8 土壤脱氢酶活性的测定 | 第101-102页 |
| 1.9 土壤蔗糖酶活性的测定 | 第102页 |
| 1.10 土壤脲酶活性的测定 | 第102-103页 |
| 1.11 土壤酸性磷酸酶活性测定 | 第103页 |
| 2 结果与分析 | 第103-112页 |
| 2.1 氯嘧磺隆对土壤微生物种群的影响 | 第103-106页 |
| 2.2 氯嘧磺隆对土壤呼吸强度的影响 | 第106-107页 |
| 2.3 氯嘧磺隆对土壤过氧化氢酶活性的影响 | 第107页 |
| 2.4 氯嘧磺隆对土壤多酚氧化酶活性的影响 | 第107-108页 |
| 2.5 氯嘧磺隆对土壤脱氢酶活性的影响 | 第108-109页 |
| 2.6 氯嘧磺隆对土壤蔗糖酶活性的影响 | 第109-110页 |
| 2.7 氯嘧磺隆对土壤脲酶活性的影响 | 第110页 |
| 2.8 氯嘧磺隆对土壤酸性磷酸酶活性的影响 | 第110-112页 |
| 第二节 氯嘧磺隆对玉米生长的抑制 | 第112-115页 |
| 1 材料与方法 | 第112-113页 |
| 1.1 供试玉米种子及处理 | 第112页 |
| 1.2 供试土壤 | 第112页 |
| 1.3 实验设计 | 第112-113页 |
| 2 结果与分析 | 第113-115页 |
| 2.1 红壤中不同浓度氯嘧磺隆对玉米生长的抑制 | 第113页 |
| 2.2 黄棕壤中不同浓度氯嘧磺隆对玉米生长的抑制 | 第113-114页 |
| 2.3 高沙土中不同浓度氯嘧磺隆对玉米生长的抑制 | 第114-115页 |
| 第三节 LW3菌株用于氯嘧磺隆污染土壤的修复研究 | 第115-129页 |
| 1 材料与方法 | 第115-118页 |
| 1.1 供试菌株、植株、培养基与试剂 | 第115-116页 |
| 1.2 供试土壤 | 第116页 |
| 1.3 菌种制备 | 第116页 |
| 1.4 土壤中降解菌株LW3的跟踪 | 第116页 |
| 1.5 接种量对LW3菌株降解三种土壤中氯嘧磺隆的影响 | 第116-117页 |
| 1.6 土壤温度对LW3菌株降解土壤中氯嘧磺隆的影响 | 第117页 |
| 1.7 土壤pH对LW3菌株降解土壤中氯嘧磺隆的影响 | 第117页 |
| 1.8 土壤含水量LW3菌株降解土壤中氯嘧磺隆的影响 | 第117页 |
| 1.9 土壤中氯嘧磺隆的提取及检测 | 第117页 |
| 1.10 LW3菌株解除氯嘧磺隆对玉米药害的研究 | 第117-118页 |
| 2 结果与分析 | 第118-129页 |
| 2.1 降解菌LW3的GFP标记 | 第118页 |
| 2.2 标记菌株LWBR3在土壤中的存活情况 | 第118-119页 |
| 2.3 LW3菌株在土壤中降解氯嘧磺隆的效果 | 第119-120页 |
| 2.4 降解菌接种量对土壤中氯嘧磺隆降解的影响 | 第120-122页 |
| 2.5 土壤温度对土壤中氯嘧磺隆降解的影响 | 第122-124页 |
| 2.6 土壤pH对土壤中氯嘧磺隆降解的影响 | 第124-125页 |
| 2.7 土壤含水量对土壤中氯嘧磺隆降解的影响 | 第125-128页 |
| 2.8 LW3菌株对玉米药害的解除效果 | 第128-129页 |
| 3 本章讨论 | 第129-130页 |
| 4 本章小结 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-134页 |
| 全文总结 | 第134-136页 |
| 本论文主要创新点及不足 | 第136-137页 |
| 附录一 文中所用的培养基及试剂配方 | 第137-139页 |
| 附录二 降解菌株的16S rDNA序列 | 第139-141页 |
| 附录三 攻读博士学位期间发表的文章 | 第141-143页 |
| 致谢 | 第143页 |
