| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-22页 |
| 1.1 次级代谢 | 第9-11页 |
| 1.1.1 概述 | 第9页 |
| 1.1.2 次级代谢产物的分类 | 第9-11页 |
| 1.2 培养条件对发酵的影响 | 第11-13页 |
| 1.2.1 温度对发酵的影响 | 第11页 |
| 1.2.2 pH对发酵的影响 | 第11-12页 |
| 1.2.3 溶解氧对发酵的影响 | 第12页 |
| 1.2.4 其他 | 第12-13页 |
| 1.3 发酵的操作方式 | 第13-15页 |
| 1.3.1 分批培养 | 第13-14页 |
| 1.3.2 补料分批培养 | 第14页 |
| 1.3.3 半连续培养 | 第14页 |
| 1.3.4 连续培养 | 第14-15页 |
| 1.4 发酵过程优化与放大 | 第15-17页 |
| 1.4.1 发酵过程的优化 | 第15-16页 |
| 1.4.2 发酵过程的放大 | 第16-17页 |
| 1.5 海洋微生物活性物质研究进展 | 第17-20页 |
| 1.6 课题研究背景 | 第20-22页 |
| 第2章 1403C发酵条件的初步优化 | 第22-33页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 菌株 | 第22页 |
| 2.2.2 主要实验仪器与试剂 | 第22页 |
| 2.2.3 培养基 | 第22-23页 |
| 2.2.4 培养方法 | 第23页 |
| 2.2.5 分析方法 | 第23-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 2.3.1 1403C摇瓶发酵基本特性 | 第25-29页 |
| 2.3.3 DO对No.1403菌体生长和1403C生物合成的影响 | 第29页 |
| 2.3.4 剪切力对No.1403菌体生长和1403C生物合成的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.5 摇瓶中分批次补糖培养对No.1403菌体生长和1403C生物合成的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-33页 |
| 第3章 5L罐中1403C分批与补料发酵过程研究 | 第33-51页 |
| 3.1 前言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 菌株、培养基、分析方法 | 第33页 |
| 3.2.2 主要实验仪器与试剂 | 第33页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.3.1 5L罐上分批发酵培养 | 第33-34页 |
| 3.2.3.2 5L罐上补料发酵培养 | 第34-35页 |
| 3.2.3.3 pH电极和DO电极的灭菌及校正方法 | 第35页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第35-49页 |
| 3.3.1 红树林内生真菌No.1403合成1403C的5L罐分批发酵过程 | 第36页 |
| 3.3.2 高转速对红树林内生真菌No.1403合成1403C分批发酵过程的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.3 不同脉冲式补料对红树林内生真菌No:1403合成1403C发酵过程的影响 | 第37-49页 |
| 3.3.3.1 初始葡萄糖浓度为10g/L时脉冲式补料对No.1403发酵过程的影响 | 第37-42页 |
| 3.3.3.2 初始葡萄糖浓度为4gL时脉冲式补料对No.1403发酵过程的影响 | 第42-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第4章 1403C发酵过程的放大 | 第51-55页 |
| 4.1 前言 | 第51页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第51-52页 |
| 4.2.1 菌株、培养基、分析方法 | 第51页 |
| 4.2.2 主要实验仪器和试剂 | 第51页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-54页 |
| 4.3.1 30L罐发酵特性 | 第52-53页 |
| 4.3.2 500L罐发酵特性 | 第53-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 第5章 结论与展望 | 第55-57页 |
| 5.1 结论 | 第55页 |
| 5.2 展望 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 论文发表 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
