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CP-25合成工艺优化、体内过程研究及其类似物6-AP的初步探索

英文缩略词表第15-18页
中文摘要第18-23页
英文摘要第23-27页
前言第29-32页
第一章 CP-25的合成工艺优化研究第32-43页
    1 实验材料第32-33页
        1.1 药物及试剂第32页
        1.2 仪器与设备第32-33页
    2 合成工艺及单因素试验考察结果第33-42页
        2.1 合成工艺路线第33页
        2.2 合成工艺描述第33页
        2.3 合成反应条件的单因素考察第33-37页
            2.3.1 反应物摩尔比对收率的影响第34页
            2.3.2 缚酸剂用量对收率的影响第34-35页
            2.3.3 溶剂用量对收率的影响第35页
            2.3.4 反应时间对收率的影响第35-36页
            2.3.5 反应温度对收率的影响第36-37页
            2.3.6 催化剂用量对收率的影响第37页
        2.4 正交试验及结果第37-40页
            2.4.1 正交试验设计第37-38页
            2.4.2 正交设计优化结果第38-40页
            2.4.3 各因素极差分析结果第40页
        2.5 最佳优化工艺的稳定性考察第40-41页
        2.6 高效液相色谱测定纯度结果第41-42页
    3 讨论第42-43页
第二章 CP-25的血浆蛋白结合率测定第43-71页
    1 实验材料第44页
        1.1 药物及试剂第44页
        1.2 仪器与设备第44页
    2 实验方法第44-48页
        2.1 溶液配制和血浆来源第44-45页
        2.2 血浆蛋白结合率实验第45-46页
            2.2.1 CP-25与Pae的血浆蛋白结合率实验第45-46页
            2.2.2 CP-25在不同种属中的血浆蛋白结合率实验第46页
            2.2.3 抗炎免疫药物对CP-25血浆蛋白结合率的影响实验第46页
        2.3 血浆样品中CP-25和Pae含量测定方法的建立第46-47页
            2.3.1 色谱条件及其专属性第46-47页
            2.3.2 血浆样品中CP-25和Pae标准曲线的建立第47页
            2.3.3 超滤膜回收率实验考察第47页
            2.3.4 精密度实验考察第47页
            2.3.5 稳定性实验考察第47页
        2.4 数据处理第47-48页
    3 实验结果第48-67页
        3.1 CP-25与Pae的血浆蛋白结合率第48-52页
            3.1.1 专属性考察第48-49页
            3.1.2 标准曲线的绘制第49页
            3.1.3 超滤膜回收率实验结果第49-50页
            3.1.4 精密度结果第50-51页
            3.1.5 稳定性结果第51页
            3.1.6 CP-25与Pae血浆蛋白结合率比较第51-52页
        3.2 不同种属血浆中CP-25的血浆蛋白结合率第52-56页
            3.2.1 专属性考察第52-54页
            3.2.2 标准曲线的绘制第54页
            3.2.3 超滤膜回收率实验结果第54页
            3.2.4 精密度实验结果第54-55页
            3.2.5 稳定性实验结果第55页
            3.2.6 CP-25在不同种属的血浆蛋白结合率比较第55-56页
        3.3 CP-25与不同抗炎免疫药物联合应用后大鼠血浆蛋白结合率第56-67页
            3.3.1 专属性考察第56-61页
            3.3.2 标准曲线的绘制第61页
            3.3.3 超滤膜的回收率实验第61-62页
            3.3.4 精密度实验结果第62页
            3.3.5 稳定性实验结果第62-63页
            3.3.6 CP-25与不同药物联合应用后血浆蛋白结合率的比较第63-67页
                3.3.6.1 CP-25与双氯芬酸钠联合应用后血浆蛋白结合率第63-64页
                3.3.6.2 CP-25与来氟米特联合应用后血浆蛋白结合率第64-65页
                3.3.6.3 CP-25与塞来昔布联合应用后血浆蛋白结合率第65-67页
    4 讨论第67-71页
第三章 CP-25在大鼠体内的排泄研究第71-95页
    1 实验材料第71-72页
        1.1 药物及试剂第71页
        1.2 仪器与设备第71页
        1.3 实验动物第71-72页
    2 实验方法第72-75页
        2.1 灌胃药液的配制第72页
        2.2 生物样品的采集和处理第72-73页
            2.2.1 生物样品的采集第72页
                2.2.1.1 大鼠尿液和粪便的采集第72页
                2.2.1.2 大鼠胆汁的采集第72页
            2.2.2 生物样品的处理第72-73页
                2.2.2.1 尿液样品的处理第72-73页
                2.2.2.2 粪便样品的处理第73页
                2.2.2.3 胆汁样品的处理第73页
        2.3 生物样品中CP-25含量测定方法的建立第73-74页
            2.3.1 色谱条件第73页
            2.3.2 储备液及标准液的配制第73-74页
                2.3.2.1 尿液样品中CP-25标准曲线的建立第73-74页
                2.3.2.2 粪便样品中CP-25标准曲线的建立第74页
                2.3.2.3 胆汁样品中CP-25标准曲线的建立第74页
            2.3.3 回收率实验考察第74页
            2.3.4 精密度实验考察第74页
            2.3.5 稳定性实验考察第74页
        2.4 数据处理第74-75页
    3 实验结果第75-92页
        3.1 尿液中CP-25的定量分析结果第75-81页
            3.1.1 专属性考察第75页
            3.1.2 标准曲线的绘制第75-76页
            3.1.3 回收率实验结果第76页
            3.1.4 精密度实验结果第76-77页
            3.1.5 稳定性实验结果第77页
            3.1.6 大鼠尿液中CP-25的排泄结果第77-81页
                3.1.6.1 不同时间段大鼠尿液中CP-25的累积排泄率第77-79页
                3.1.6.2 不同性别大鼠尿液中CP-25累积排泄率和排泄速率比较第79-81页
        3.2 粪便中CP-25的定量分析结果第81-88页
            3.2.1 专属性考察第81-82页
            3.2.2 标准曲线的绘制第82页
            3.2.3 回收率实验结果第82-83页
            3.2.4 精密度实验结果第83页
            3.2.5 稳定性实验结果第83-84页
            3.2.6 大鼠粪便中CP-25的排泄结果第84-88页
                3.2.6.1 不同时间段大鼠粪便中CP-25的累积排泄率第84-85页
                3.2.6.2 不同性别大鼠粪便中CP-25累积排泄率和排泄速率比较第85-88页
        3.3 胆汁中CP-25的定量分析结果第88-92页
            3.3.1 专属性考察第88页
            3.3.2 标准曲线的绘制第88页
            3.3.3 回收率实验结果第88-89页
            3.3.4 精密度实验结果第89页
            3.3.5 稳定性实验结果第89-90页
            3.3.6 大鼠胆汁中CP-25的排泄结果第90-92页
                3.3.6.1 不同时间段大鼠胆汁中CP-25的累积排泄率第90-91页
                3.3.6.2 不同性别大鼠胆汁中CP-25累积排泄率和排泄速率比较第91-92页
    4 讨论第92-95页
第四章 CP-25在大鼠体内的代谢研究第95-115页
    1 实验材料第95-96页
        1.1 药物及试剂第95-96页
        1.2 仪器与设备第96页
        1.3 实验动物第96页
    2 实验方法第96-99页
        2.1 灌胃药液的配制第96页
        2.2 生物样品的采集和处理第96-98页
            2.2.1 生物样品的采集第96-97页
                2.2.1.1 大鼠血浆样品的采集第96-97页
                2.2.1.2 大鼠尿液和粪便样品的采集第97页
                2.2.1.3 大鼠胆汁样品的采集第97页
            2.2.2 生物样品的处理第97-98页
                2.2.2.1 血浆样品的处理第97页
                2.2.2.2 尿液样品的处理第97-98页
                2.2.2.3 粪便样品的处理第98页
                2.2.2.4 胆汁样品的处理第98页
        2.3 LC-MS条件的建立第98-99页
            2.3.1 色谱条件的摸索第98页
            2.3.2 质谱条件的优化第98-99页
    3 实验结果第99-113页
        3.1 CP-25和芍药苷对照品的HPLC-MS/MS分析第99-100页
        3.2 CP-25在大鼠血浆中的代谢产物研究第100-105页
        3.3 CP-25在大鼠粪便中的代谢产物研究第105-110页
        3.4 CP-25在大鼠尿液中的代谢产物研究第110-111页
        3.5 CP-25在大鼠胆汁中的代谢产物研究第111-113页
    4 讨论第113-115页
第五章 单乙酰芍药苷(6-AP)的初步探索第115-140页
    1 6-AP的合成第115-119页
        1.1 实验材料第116-117页
            1.1.1 药物及试剂第116-117页
            1.1.2 仪器与设备第117页
        1.2 6-AP的合成及结构鉴定第117-119页
            1.2.1 6-AP的合成第117页
            1.2.2 6-AP的结构鉴定第117-119页
    2 6-AP的药代动力学研究第119-128页
        2.1 实验材料第119-120页
            2.1.1 药物及试剂第119页
            2.1.2 实验动物第119页
            2.1.3 仪器与设备第119-120页
        2.2 实验方法第120-121页
            2.2.1 血浆中6-AP定量分析方法的建立第120-121页
                2.2.1.1 色谱条件及其专属性第120页
                2.2.1.2 储备液及标准液的配制第120页
                2.2.1.3 血浆中6-AP和Pae标准曲线建立第120页
                2.2.1.4 回收率实验考察第120页
                2.2.1.5 精密度实验考察第120-121页
                2.2.1.6 稳定性实验考察第121页
            2.2.2 6-AP和Pae灌胃给药在正常大鼠体内药代动力学研究第121页
            2.2.3 数据处理第121页
        2.3 实验结果第121-128页
            2.3.1 血浆中6-AP和Pae定量分析结果第121-125页
                2.3.1.1 专属性考察第121-122页
                2.3.1.2 标准曲线的绘制第122页
                2.3.1.3 回收率实验结果第122-123页
                2.3.1.4 精密度实验结果第123-124页
                2.3.1.5 稳定性实验结果第124-125页
            2.3.2 正常大鼠口服灌胃Pae和6-AP后经时血药浓度和药时曲线第125-126页
            2.3.3 正常大鼠口服灌胃CP-25和Pae的药代动力学参数及比较第126-128页
    3 6-AP的抗炎和免疫调节活性初步研究第128-138页
        3.1 实验材料第128-129页
            3.1.1 药物及试剂第128-129页
            3.1.2 仪器与设备第129页
            3.1.3 实验动物第129页
        3.2 DNCB诱导小鼠变应性接触性皮炎(ACD)模型及其评价第129-132页
            3.2.1 小鼠ACD模型的制备第129页
            3.2.2 动物分组及处理第129-130页
            3.2.3 耳片肿胀度和脾脏指数的测定第130页
            3.2.4 ConA诱导的脾T淋巴细胞增殖反应第130页
            3.2.5 ACD模型小鼠脾脏和耳片的组织病理学检查第130-131页
            3.2.6 ACD小鼠淋巴细胞上清液细胞因子的含量检测第131-132页
            3.2.7 数据处理第132页
        3.3 实验结果第132-138页
            3.3.1 6-AP对ACD小鼠耳肿胀的抑制作用第132-133页
            3.3.2 6-AP对ACD小鼠脾脏指数的影响第133-134页
            3.3.3 6-AP对正常及ACD小鼠T细胞增殖的影响第134-135页
            3.3.4 CP-25对ACD小鼠耳片病理和脾脏病理的影响第135-137页
            3.3.5 CP-25对ACD小鼠淋巴细胞上清液细胞因子的影响第137-138页
    4 讨论第138-140页
结论第140-142页
    1 CP-25的最优合成工艺第140页
    2 CP-25的体外血浆蛋白结合率第140页
    3 CP-25在大鼠体内的排泄研究第140-141页
    4 CP-25在大鼠体内的代谢研究第141页
    5 6-AP的初步探索第141-142页
本研究创新点第142页
下一步工作设想第142-143页
参考文献第143-151页
附录第151-154页
致谢第154-156页
综述:细胞色素P450与抗风湿病药物相互作用的研究进展第156-172页
    参考文献第165-172页

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