| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 1 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 植物多酚的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.1.1 多酚的结构与分类 | 第14-15页 |
| 1.1.2 松多酚的结构和功能特性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 多酚的生物合成途径 | 第16-18页 |
| 1.2 植物次生代谢合成调控的研究 | 第18-25页 |
| 1.2.1 诱导子对植物次生代谢合成的调控作用 | 第20-22页 |
| 1.2.2 诱导子促进次生代谢合成的作用机制 | 第22-25页 |
| 1.3 研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 1.4 研究的主要内容 | 第26-27页 |
| 2 促进红松多酚合成诱导子的筛选 | 第27-39页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第27-28页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 红松不定芽的培养 | 第27页 |
| 2.1.3 诱导子处理 | 第27-28页 |
| 2.1.4 多酚提取方法 | 第28页 |
| 2.1.5 多酚含量测定方法 | 第28页 |
| 2.1.6 原花青素含量测定方法 | 第28页 |
| 2.1.7 数据处理 | 第28页 |
| 2.2 结果及分析 | 第28-38页 |
| 2.2.1 前体物质(PHE、CA)对红松多酚合成的影响 | 第28-30页 |
| 2.2.2 植物激素(MeJA、SA)对红松多酚合成的影响 | 第30-33页 |
| 2.2.3 生物诱导子(CTS、YE)对红松多酚合成的影响 | 第33-35页 |
| 2.2.4 稀土元素(La、Eu)对红松多酚合成的影响 | 第35-37页 |
| 2.2.5 诱导子对松多酚合成诱导效果的对比分析 | 第37-38页 |
| 2.3 本章小结 | 第38-39页 |
| 3 Plackett-Burman和Box-Benhnken Design设计优化促进红松多酚合成诱导条件的研究 | 第39-47页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第39-40页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.2 Plackett-Barman实验设计 | 第39页 |
| 3.1.3 最陡爬坡实验设计 | 第39-40页 |
| 3.1.4 响应面实验设计 | 第40页 |
| 3.1.5 数据处理 | 第40页 |
| 3.2 结果与分析 | 第40-46页 |
| 3.2.1 Plackett-Barman实验设计确定关键影响因素 | 第40-41页 |
| 3.2.2 最陡爬坡试验研究最大响应值的响应区域 | 第41-42页 |
| 3.2.3 响应面优化试验结果分析 | 第42-44页 |
| 3.2.4 诱导效果的对比 | 第44-46页 |
| 3.3 本章小结 | 第46-47页 |
| 4 诱导子对红松氧化应激防御系统的影响 | 第47-54页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 4.1.2 氧化应激防御系统相关酶的提取方法 | 第47页 |
| 4.1.3 氧化应激防御系统相关酶活测定方法 | 第47-48页 |
| 4.1.4 数据处理 | 第48页 |
| 4.2 结果与分析 | 第48-53页 |
| 4.2.1 诱导子对红松不定芽生长的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 诱导子对抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.3 诱导子对PAL和C4H活性的影响 | 第50-52页 |
| 4.2.4 诱导子对多酚和原花青素积累量的影响 | 第52-53页 |
| 4.3 本章小结 | 第53-54页 |
| 5 红松转录组构建和Illumina HiSeq 2500测序 | 第54-69页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第54-56页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第54页 |
| 5.1.2 测序文库的构建 | 第54-55页 |
| 5.1.3 生物信息分析 | 第55-56页 |
| 5.1.4 Unigene功能注释 | 第56页 |
| 5.2 结果与分析 | 第56-68页 |
| 5.2.1 转录组数据库的组装 | 第56-58页 |
| 5.2.2 Unigene功能注释 | 第58页 |
| 5.2.3 GO数据库注释分析 | 第58-61页 |
| 5.2.4 KOG数据库注释分析 | 第61-63页 |
| 5.2.5 Unigene KEGG Pathway注释分析 | 第63-68页 |
| 5.3 本章小结 | 第68-69页 |
| 6 诱导子调控红松多酚合成基因表达及作用机制分析 | 第69-84页 |
| 6.1 实验材料与方法 | 第69-72页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第69页 |
| 6.1.2 差异表达量计算 | 第69-70页 |
| 6.1.3 RT-PCR分析多酚合成结构基因表达 | 第70-72页 |
| 6.1.4 HPLC法测定多酚组分含量 | 第72页 |
| 6.2 结果与分析 | 第72-83页 |
| 6.2.1 Unigene的差异表达分析 | 第72-73页 |
| 6.2.2 差异表达基因GO显著富集分析 | 第73-75页 |
| 6.2.3 差异表达基因Pathway显著富集分析 | 第75-79页 |
| 6.2.4 诱导子对多酚合成相关基因表达的影响 | 第79-80页 |
| 6.2.5 CTS+La+MeJA对红松多酚合成的调控作用 | 第80-83页 |
| 6.3 本章小结 | 第83-84页 |
| 结论 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-101页 |
| 附录 | 第101-102页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
