| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-24页 |
| 一、骨髓间充质干细胞（MSC）的生物学特性及分离纯化 | 第16-18页 |
| 二、MSC 治疗心肌梗死的研究现状 | 第18-22页 |
| 三、存在问题和解决办法 | 第22-23页 |
| 四、MSC 治疗心肌梗死展望 | 第23-24页 |
| 第一部分 糖尿病与非糖尿病患者骨髓间充质干细胞基因表达差异分析 | 第24-43页 |
| 1 材料 | 第24-27页 |
| 2 方法 | 第27-35页 |
| 2.1 MSC的获取、分离、培养 | 第27-28页 |
| 2.2 MSC生长曲线的绘制 | 第28页 |
| 2.3 MSC的形态学和表型鉴定 | 第28页 |
| 2.4 基因芯片检测MSC基因表达 | 第28-34页 |
| 2.5 基因表达差异在蛋白水平的验证 | 第34-35页 |
| 2.6 统计学处理 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-41页 |
| 3.1 MSC的培养和观察 | 第35-37页 |
| 3.2 MSC表面标志物鉴定 | 第37页 |
| 3.3 基因芯片待测RNA质量控制情况 | 第37-38页 |
| 3.4 基因表达谱差异情况 | 第38-40页 |
| 3.5 差异基因表达在蛋白水平的验证 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 第二部分 糖尿病与非糖尿病的冠心病患者骨髓间充质干细胞治疗大鼠心肌梗死疗效比较 | 第43-54页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| 2 方法 | 第44-48页 |
| 2.1 病例资料与细胞培养 | 第44页 |
| 2.2 大鼠心肌梗死模型的制作 | 第44-45页 |
| 2.3 骨髓间充干细胞移植 | 第45页 |
| 2.4 超声心动图检测 | 第45页 |
| 2.5 心肌细胞凋亡检测 | 第45-46页 |
| 2.6 心肌组织蛋白印迹检测 | 第46-47页 |
| 2.7 免疫组化检测 | 第47-48页 |
| 2.8 统计学方法 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-51页 |
| 3.1 大鼠心肌梗死模型的建立 | 第48-49页 |
| 3.2 超声心动图结果 | 第49-50页 |
| 3.3 心肌细胞凋亡检测情况 | 第50页 |
| 3.4 心肌组织蛋白表达情况 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| 第三部分 Bcl-x L基因修饰对MSC治疗心肌梗死的疗效影响 | 第54-80页 |
| 1 材料 | 第55-57页 |
| 2 方法 | 第57-65页 |
| 2.1 慢病毒包装 | 第57-59页 |
| 2.2 细胞转导 | 第59-61页 |
| 2.3 细胞成像 | 第61页 |
| 2.4 免疫表型鉴定 | 第61页 |
| 2.5 Annexin V/PI方法检测低氧条件下MSC凋亡情况 | 第61-62页 |
| 2.6 体外培养MSC分泌细胞因子的检测 | 第62-63页 |
| 2.7 心肌梗死模型建立和骨髓间充质干细胞移植 | 第63页 |
| 2.8 移植细胞存活率测定 | 第63-64页 |
| 2.9 细胞移植后心肌细胞凋亡情况分析 | 第64页 |
| 2.10 毛细血管密度测定 | 第64页 |
| 2.11 瘢痕形成情况检测 | 第64-65页 |
| 2.12 MSC移植后心脏功能评估 | 第65页 |
| 2.13 统计学分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-77页 |
| 3.1 增强型绿色荧光蛋白和人Bcl-x L在基因修饰的大鼠骨髓基质干细胞内的表达 | 第65-69页 |
| 3.2 基因修饰的大鼠MSC的免疫表型特征 | 第69-70页 |
| 3.3 Bcl-x L修饰抑制MSC的体外凋亡 | 第70-71页 |
| 3.4 Bcl-x L修饰促进MSC内血管生成细胞因子的分泌 | 第71-72页 |
| 3.5 Bcl-x L修饰促进MSC在缺血心肌中的存活 | 第72-74页 |
| 3.6 h Bcl-x L修饰的MSC可增强心肌细胞抗凋亡能力 | 第74-75页 |
| 3.7 Bcl-x L修饰的MSC促进心肌梗死后的血管新生和预防瘢痕形成 | 第75页 |
| 3.8 Bcl-x L修饰的MSC可促进MI后心脏功能的恢复 | 第75-77页 |
| 4 讨论 | 第77-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 个人简历和研究成果 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
