| 缩略语表 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 前言 | 第17-18页 |
| 文献回顾 | 第18-36页 |
| 第一部分：糖尿病小鼠模型的建立及Inpp5f在心脏组织中的表达 | 第36-48页 |
| 1． 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 实验材料 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36-37页 |
| 1.3 主要仪器 | 第37页 |
| 2．方法 | 第37-42页 |
| 2.1 STZ和HFD糖尿病小鼠模型的建立 | 第37页 |
| 2.2 Inpp5f在糖尿病小鼠心脏组织中的表达 | 第37-41页 |
| 2.3 糖尿病小鼠模型血清学检测 | 第41-42页 |
| 3.结果 | 第42-46页 |
| 3.1 糖尿病小鼠模型的血清学指标检测： | 第42-44页 |
| 3.2 糖尿病小鼠心脏组织中Inpp5f的表达 | 第44-45页 |
| 3.3 糖尿病小鼠血清学指标与心脏Inpp5f表达的相关性分析 | 第45-46页 |
| 4.讨论 | 第46-48页 |
| 第二部分：Inpp5f表达与糖尿病小鼠心脏功能的相关性分析 | 第48-55页 |
| 1．材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验材料 | 第48页 |
| 1.2 主要试剂 | 第48页 |
| 1.3 主要仪器 | 第48-49页 |
| 2. 方法 | 第49-50页 |
| 2.1 糖尿病小鼠心脏形态和功能检测 | 第49-50页 |
| 3. 结果 | 第50-53页 |
| 3.1 糖尿病小鼠模型心脏形态观察及心脏功能检测 | 第50-51页 |
| 3.2 心脏Inpp5f表达水平及其与心脏功能的相关性 | 第51-53页 |
| 4.讨论 | 第53-55页 |
| 第三部分：Inpp5f在糖尿病小鼠心脏中表达升高原因分析 | 第55-59页 |
| 1．材料 | 第55-56页 |
| 1.1 实验材料 | 第55页 |
| 1.2 主要试剂 | 第55-56页 |
| 1.3 主要仪器 | 第56页 |
| 2.方法 | 第56-57页 |
| 2.1 细胞培养和药物处理 | 第56-57页 |
| 3.结果 | 第57-58页 |
| 4.讨论 | 第58-59页 |
| 第四部分：Inpp5f表达的深层分子机制探讨 | 第59-70页 |
| 1．材料 | 第59-60页 |
| 1.1 实验材料 | 第59页 |
| 1.2 主要试剂 | 第59-60页 |
| 1.3 主要仪器 | 第60页 |
| 2.方法 | 第60-64页 |
| 2.1 载体构建 | 第60-61页 |
| 2.2 质粒转染 | 第61页 |
| 2.3 Inpp5f启动子双荧光素酶报告系统 | 第61页 |
| 2.4 胞浆蛋白和核蛋白提取 | 第61-62页 |
| 2.5 染色质免疫共沉淀（Ch IP） | 第62-64页 |
| 3.结果 | 第64-68页 |
| 3.1 Inpp5f种属保守性分析和启动子序列分析 | 第64-65页 |
| 3.2 胰岛素，高糖和FFA通过不同转录因子促进Inpp5f的表达 | 第65-67页 |
| 3.3 Sp1和NF-κB直接转录调节Inpp5f表达 | 第67-68页 |
| 4.讨论 | 第68-70页 |
| 第五部分：Inpp5f对心肌细胞Akt活性和葡萄糖转运的影响 | 第70-76页 |
| 1．材料 | 第70-71页 |
| 1.1 实验材料 | 第70页 |
| 1.2 主要试剂 | 第70-71页 |
| 1.3 主要仪器 | 第71页 |
| 2.方法 | 第71-73页 |
| 2.1 si RNA转染 | 第71-72页 |
| 2.2 流式细胞术检测 2-NBDG的摄取 | 第72页 |
| 2.3 腺病毒载体的构建和病毒包装 | 第72页 |
| 2.4 Akt活性检测 | 第72-73页 |
| 3．结果 | 第73-75页 |
| 3.1 糖尿病心脏组织中Inpp5f表达与Akt活性的相关性分析 | 第73页 |
| 3.2 心肌细胞中Inpp5f对Akt的影响 | 第73-74页 |
| 3.3 Inpp5f对心肌细胞葡萄糖转运的影响 | 第74-75页 |
| 4.讨论 | 第75-76页 |
| 小结 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-89页 |
| 个人简介和研究成果 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
