| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-19页 |
| 1.1 微生物多糖概述 | 第9页 |
| 1.2 微生物胞外多糖的提取及分离纯化 | 第9-10页 |
| 1.2.1 微生物胞外多糖的提取 | 第9-10页 |
| 1.2.2 微生物多糖的分离纯化 | 第10页 |
| 1.3 多糖的结构分析 | 第10-13页 |
| 1.3.1 酸水解法 | 第11页 |
| 1.3.2 高碘酸氧化和Smith降解 | 第11页 |
| 1.3.3 甲基化分析法 | 第11-12页 |
| 1.3.4 红外光谱法 | 第12页 |
| 1.3.5 核磁共振法 | 第12页 |
| 1.3.6 质谱法 | 第12-13页 |
| 1.4 多糖的生物活性 | 第13-14页 |
| 1.4.1 抗氧化性 | 第13页 |
| 1.4.2 免疫调节 | 第13-14页 |
| 1.4.3 抗肿瘤 | 第14页 |
| 1.4.4 其他活性 | 第14页 |
| 1.5 多糖化学修饰研究进展 | 第14-16页 |
| 1.5.1 硫酸化修饰 | 第15页 |
| 1.5.2 羧甲基化修饰 | 第15页 |
| 1.5.3 乙酰化修饰 | 第15页 |
| 1.5.4 磷酸化修饰 | 第15-16页 |
| 1.6 微生物多糖的应用 | 第16页 |
| 1.7 解淀粉芽孢杆菌的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.8 本课题研究意义及内容 | 第17-19页 |
| 1.8.1 本课题的研究意义 | 第17页 |
| 1.8.2 本课题的主要研究内容 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 试验菌株与细胞 | 第19页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-32页 |
| 2.2.1 试验用培养基的配置 | 第21页 |
| 2.2.2 解淀粉芽孢杆菌产胞外多糖的发酵条件的优化 | 第21-24页 |
| 2.2.3 解淀粉芽孢杆菌胞外多糖的分离纯化 | 第24-25页 |
| 2.2.4 解淀粉芽孢杆菌胞外多糖P的结构分析 | 第25-26页 |
| 2.2.5 解淀粉芽孢杆菌胞外多糖P的化学修饰 | 第26-27页 |
| 2.2.6 解淀粉芽孢杆菌胞外多糖P及其衍生物的体外功能评价 | 第27-32页 |
| 3 结果与讨论 | 第32-50页 |
| 3.1 解淀粉芽孢杆菌胞外多糖的发酵条件的优化 | 第32-39页 |
| 3.1.1 培养基成分对胞外多糖产量的影响 | 第32-34页 |
| 3.1.2 培养条件对胞外多糖产量的影响 | 第34-37页 |
| 3.1.3 响应面分析法对胞外多糖发酵条件的优化 | 第37-39页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第39-41页 |
| 3.2.1 胞外多糖的Superdex G 200纯化 | 第39-40页 |
| 3.2.2 多糖P的纯度鉴定和分子量表征 | 第40页 |
| 3.2.3 多糖P的化学组成 | 第40-41页 |
| 3.3 多糖P的结构分析 | 第41-44页 |
| 3.3.1 多糖P的单糖组成分析 | 第41页 |
| 3.3.2 多糖P的红外光谱分析 | 第41-42页 |
| 3.3.3 多糖P的核磁共振分析 | 第42-43页 |
| 3.3.4 多糖P的甲基化反应及GC-MS分析 | 第43-44页 |
| 3.4 胞外多糖P衍生物结构鉴定与生物活性研究 | 第44-50页 |
| 3.4.1 多糖P衍生物的物理特性 | 第44页 |
| 3.4.2 多糖P衍生物的红外光谱 | 第44-46页 |
| 3.4.3 多糖P及其衍生物体外抗氧化性分析 | 第46-48页 |
| 3.4.4 多糖P及其衍生物体外抗菌性研究 | 第48页 |
| 3.4.5 多糖P及其衍生物体外抗肿瘤研究 | 第48-50页 |
| 4 结论 | 第50-51页 |
| 5 展望 | 第51-52页 |
| 6 参考文献 | 第52-59页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第59-60页 |
| 8 致谢 | 第60页 |
