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β-catenin在桥本氏甲状腺炎淋巴细胞浸润中的作用及机制研究

摘要第5-8页
Abstract第8-10页
第一章 绪论第16-22页
    1.1 桥本氏甲状腺炎第16-17页
        1.1.1 简介第16页
        1.1.2 流行病学第16页
        1.1.3 免疫病理特征第16-17页
        1.1.4 研究现状第17页
    1.2 γ-干扰素第17-18页
        1.2.1 干扰素第17-18页
        1.2.2 γ-干扰素第18页
        1.2.3 γ-干扰素与桥本氏甲状腺炎第18页
    1.3 β-catenin第18-20页
        1.3.1 β-catenin简介第18-19页
        1.3.2 Wnt/β-catenin信号通路第19页
        1.3.3 Wnt/β-catenin信号通路与自身免疫性疾病第19-20页
    1.4 趋化因子第20-21页
        1.4.1 趋化因子简介第20-21页
        1.4.2 趋化因子与自身免疫性疾病第21页
    1.5 小结第21-22页
第二章 研究目的、内容、方法、意义及实验方案设计第22-24页
    2.1 研究目的第22页
    2.2 研究内容第22页
    2.3 研究方法及技术第22页
    2.4 研究意义第22-23页
    2.5 实验方案设计第23-24页
        2.5.1 桥本氏甲状腺炎患者甲状腺组织与正常甲状腺组织中淋巴细胞浸润情况以及 β-catenin、IFN-γ 的表达情况第23页
        2.5.2 β-catenin对甲状腺上皮细胞株Nthy-ori 3-1 分泌趋化因子的影响及其分子机制的研究第23-24页
第三章 实验材料与方法第24-41页
    3.1 临床标本收集第24页
        3.1.1 桥本甲状腺炎及正常对照组甲状腺组织标本第24页
    3.2 主要试剂和材料第24-29页
        3.2.1 细胞株第24页
        3.2.2 相关抗体及主要试剂第24-28页
        3.2.3 主要仪器设备和耗材第28-29页
    3.3 实验方法第29-41页
        3.3.1 Nthy-ori 3-1 细胞的培养第29-31页
        3.3.2 免疫组织化学第31-32页
        3.3.3 HE染色第32页
        3.3.4 瞬时转染第32-33页
        3.3.5 提取RNA(Trizol法提取)第33-34页
        3.3.6 逆转录cDNA和实时定量PCR第34-36页
        3.3.7 免疫印迹第36-39页
        3.3.8 趋化因子蛋白芯片检测第39-41页
第四章 实验结果第41-49页
    4.1 桥本氏甲状腺炎组织中淋巴细胞浸润及 β-catenin表达情况第41-42页
        4.1.1 桥本氏甲状腺炎组织中大量淋巴细胞浸润第41页
        4.1.2 桥本氏甲状腺炎组织中 β-catenin表达量降低第41-42页
    4.2 IFN-γ 抑制甲状腺上皮细胞 β-catenin的表达第42页
        4.2.1 IFN-γ 抑制甲状腺上皮细胞 β-catenin的蛋白表达第42页
        4.2.2 IFN-γ 不影响甲状腺上皮细胞 β-catenin的mRNA表达水平第42页
    4.3 IFN-γ 降低 β-catenin的入核量第42-43页
    4.4 桥本氏甲状腺炎组织中IFN-γ 的表达情况第43-44页
    4.5 IFN-γ 能够活化GSK-3β 信号分子第44-45页
    4.6 IFN-γ 促进甲状腺上皮细胞趋化因子的分泌第45-46页
    4.7 抑制GSK-3β 的蛋白活性对趋化因子的作用改变第46-48页
        4.7.1 LiCl抑制趋化因子的分泌第46-47页
        4.7.2 siRNA-GSK-3β 抑制趋化因子的分泌第47-48页
    4.8 干扰 β-catenin后甲状腺上皮细胞分泌趋化因子增加第48-49页
第五章 讨论第49-52页
第六章 主要结论及展望第52-53页
    6.1 主要结论第52页
    6.2 展望第52-53页
参考文献第53-60页
综述第60-71页
    参考文献第66-71页
在学期间发表的学术论文第71-72页
致谢第72-73页

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