| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 文献综述 | 第15-24页 |
| 1 白梭吻鲈简介及生活习性 | 第15-16页 |
| 1.1 白梭吻鲈的分类 | 第15页 |
| 1.2 白梭吻鲈的形态特征 | 第15页 |
| 1.3 白梭吻鲈的生活习性 | 第15-16页 |
| 2 温度胁迫对鱼类影响研究进展 | 第16-17页 |
| 2.1 温度胁迫对鱼类代谢及免疫的影响 | 第16页 |
| 2.2 鱼类对胁迫反应的调节 | 第16-17页 |
| 3 温度胁迫对鱼类抗氧化调节能力研究进展 | 第17-19页 |
| 3.1 氧自由基的产生 | 第17-18页 |
| 3.2 氧自由基的清除 | 第18-19页 |
| 3.3 温度胁迫对鱼类肝脏细胞的影响 | 第19页 |
| 4 温度胁迫对鱼类血液的影响研究进展 | 第19-21页 |
| 4.1 温度胁迫对鱼类血液生理指标的影响 | 第20页 |
| 4.2 温度胁迫对鱼类血液生化指标的影响 | 第20-21页 |
| 4.3 温度胁迫对鱼类血清无机成分的影响 | 第21页 |
| 5 HSC70蛋白研究进展 | 第21-23页 |
| 5.1 热休克蛋白的概念 | 第22页 |
| 5.2 热休克蛋白70的分子结构 | 第22页 |
| 5.3 热休克蛋白的研究现状 | 第22-23页 |
| 6 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 试验一 高温胁迫对白梭吻鲈肝脏抗氧化酶的影响及组织损伤的分析 | 第24-35页 |
| 1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 1.1 材料 | 第24页 |
| 1.2 实验设计 | 第24-25页 |
| 1.3 白梭吻鲈肝脏酶液制备 | 第25页 |
| 1.4 白梭吻鲈肝脏抗氧化酶测定 | 第25页 |
| 1.5 白梭吻鲈肝脏HE染色切片制备 | 第25页 |
| 1.6 数据处理 | 第25-26页 |
| 2 结果 | 第26-31页 |
| 2.1 白梭吻鲈抗氧化酶活力测定 | 第26-30页 |
| 2.2 白梭吻鲈不同温度下肝脏HE染色切片观察 | 第30-31页 |
| 3 讨论 | 第31-35页 |
| 3.1 高温胁迫对白梭吻鲈SOD活力的影响 | 第31-32页 |
| 3.2 高温胁迫对白梭吻鲈CAT活力的影响 | 第32-33页 |
| 3.3 高温胁迫对白梭吻鲈GPX活力的影响 | 第33页 |
| 3.4 高温胁迫对白梭吻鲈MDA含量的影响 | 第33页 |
| 3.5 高温胁迫对白梭吻鲈肝脏组织的影响 | 第33-35页 |
| 试验二 高温胁迫对白梭吻鲈血液理化指标的影响 | 第35-42页 |
| 1 材料和方法 | 第35-36页 |
| 1.1 试验材料 | 第35页 |
| 1.2 试验设计 | 第35页 |
| 1.3 血细胞和血清生化指标的测定 | 第35-36页 |
| 1.4 数据处理 | 第36页 |
| 2 结果 | 第36-38页 |
| 2.1 高温胁迫对白梭吻鲈血液生理指标的影响 | 第36-37页 |
| 2.2 高温胁迫对白梭吻鲈血液生化指标的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 高温胁迫对白梭吻鲈血清离子浓度的影响 | 第38页 |
| 3 讨论 | 第38-42页 |
| 3.1 高温胁迫对白梭吻鲈血液生理指标的影响 | 第38-39页 |
| 3.2 高温胁迫对白梭吻鲈血液生化指标的影响 | 第39-41页 |
| 3.3 高温胁迫对白梭吻鲈血清离子浓度的影响 | 第41-42页 |
| 试验三 白梭吻鲈HSC70基因的克隆与表达分析 | 第42-55页 |
| 1 材料与方法 | 第42-47页 |
| 1.1 实验材料 | 第42页 |
| 1.2 试验方法 | 第42-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-50页 |
| 2.1 白梭吻鲈HSC70 cDNA扩增及序列分析 | 第47-50页 |
| 2.2 相似性比较和进化树构建 | 第50页 |
| 2.3 白梭吻鲈HSC70在各组织的表达情况 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-55页 |
| 3.1 HSC70基因的结构特征 | 第50-53页 |
| 3.2 高温胁迫下白梭吻鲈HSC70在不同组织中的表达情况 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-72页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第72-73页 |
| 附录 英汉双解缩略词表（按英文字母顺序） | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
